226 Dreiundsechzigstes Kapitel: Pyridin- und Chinolinbasen im Pflanzenreiche. 



Die älteren Untersuchungen, wie jene von Lindt (1 ), yvaren mit 

 Fehlern behaftet, welche zu falschen Schlußfolgerungen, wie zur Annahme 

 der Lokalisation der Strychnosbasen in den Zellmembranen des Samen- 

 nährgewebes, führten. In jedem Falle wird man ein geeignetes Verfahren 

 erst aufsuchen müssen, und der Erfolg wird sowohl von der Eigenart des 

 Materials als von der Alkaloidspezies sehr beeinflußt. Alle genannten Ver- 

 fahren sind nur qualitativ. Für physiologische Untersuchungen über Vor- 

 kommen und biologische Bedeutung der einzelnen Alkaloide reichen die- 

 selben ohne Beiziehung quantitativer Methoden in keiner Weise aus. Leider 

 sind in der bisherigen Literatur Arbeiten, die sich quantitativer Alkaloid- 

 bestimmungsmethodik bedienen, noch nicht zahlreich, und es sind nur die 

 Untersuchungen über Alkaloidstoffwechsel, die Meyer, E. Schmidt mit 

 ihren Schülern in ausgedehntem Maßstabe angestellt haben, in dieser Hin- 

 sicht vorbildlich. Die Untersuchungen von Lotsy (2) z. B. entsprechen ohne 

 eine Ergänzung durch quantitative Methoden für die Physiologie der China- 

 basen noch nicht dem angestrebten Zwecke. Für viele Fälle werden sich 

 die beim Coffein erwähnten Bestimmungsmethoden von Keller und 

 Beitter auch in alkaloidphysiologischen Untersuchungen als geeignet 

 erweisen (3), doch müssen sie jedem einzelnen Fall kritisch angepaßt werden. 

 Ob man das Alkaloid direkt zu wägen hat, ob man mit Titrationen auslangt, 

 etwa mit einfacher Säuretitration (4), läßt sich allgemein nicht angeben. 

 Selbstverständlich beanspruchen die flüchtigen Basen besondere Maßnahmen. 

 Bei der äußerst verschiedenen Natur der Alkaloide darf man allgemein 

 gültige Regeln für die biochemische Methodik nicht erwarten. Da man 

 für derartige Bestimmungen in der Regel keinen großen Materialaufwand 

 nötig hat, so lassen sich auch zahlreiche Fragen der Lokalisation der Al- 

 kaloide auf diesem Wege ihrer sicheren Lösung zuführen. 



So brauchen hier nur ganz kurze Notizen zur quantitativen Me- 

 thodik der Alkaloid Chemie gegeben zu werden. Die Herstellung der Jod- 

 fällung wurde mehrfach zur quantitativen Alkaloidbestimmung verwendet. 

 Als Verbindungen mit Kaliumwismutjodid (5), Kaliumquecksilberjodid (6), 

 als PerJodide (7) sind Alkaloide leicht quantitativ niederzuschlagen. Sehr 

 geeignet ist die Fällung als pikrolonsaures Salz in vielen Fällen (8). Ebenso 

 ist die Fällung als Silicowolframate weit verbreitet anwendbar (9). Bei der 

 Titrierung von reinen Alkaloidlösungen mit Säure wird man vor allem den 

 passenden Indikator zu beachten haben (1 0). Nach Veley ist die Affinitäts- 



1) 0. Lindt, Ztsch. wiss. Mikrosk., J, 237 (1884). Die übrige ältere Lit. bei 

 Errera, 1. c. — 2) Lotsy, Mededeel. van de Labor, der Gouvern. Kinaonderneming, 

 Nr. 1 (1898). — 3) Über solche Modifikationen u. a. : A. B. Lyons, Pharm. Review, 

 21, 428 (1903). A. Panchaud, Schweiz. Woch. Chem. Pharm., 41, 483 (1903). Wert- 

 volle Materialsammlung bei A. v. Korczynski, Die Methoden der exakten quantit. 

 Bestimmungen der Alkaloide. Berlin 1913. — 4) Zur acidimetr. Bestimmung vgl. 

 Kunz-Krause u. Richter, Arch. Pharm., 25s, Ö07 (1918). — 5) D. Jonescu, Ber. 

 pharm. Ges., 16, 130 (1906). — 6) G. Heikel, Chem.-Ztg., 32, 1149 (1909); Midi. 

 Drugg. and Pharm. Review, 43, 50 (1909). — 7) W. C. Holmes, The Philippine 

 Journ. Sei., 6, 253 (1911). — 8) W. H. Warren u. R. S. Weiss, Journ. Biol. 

 Chem., 3, 327. H. Matthes u. 0. Rammstedt, Ztsch. analyt. Chem. (1907), 46, 

 565. — 9) M. Javillier, Bull. Sei. Pharm., 17, 315 (1910). H. R. Jensen, Pharm. 

 Journ. (4), 36, 658 (1913). Ferencz u. David, Pharm. Post, 47, 559 (1914). Taigner, 

 Ztsch. analyt. Chem., 58, 346(1919). Aluminiumsilicatfällung: S. Waldbott, Journ. 

 Amer. Chem. Soc, 35, 837 (1913). — 10) Vgl. A. v. Korczynski, 1. c. (1913). 

 E. Runne, Apoth.-Ztg., 24, 662 (1909). Jodometrie: R. Fabinyi, Verh. Naturf. 

 Ges., 1911, II, j, 228. Säureaffinität: V. H. Veley, Proc. Chem. Soc, 24, 234 

 (1909); Journ. Chem. Soc, 95, 758 (1909). E. Elvove, Journ. Amer. Chem. Soc, 

 32, 132 (1910). Ed. Schaer, Verh. Naturf. Ges. (1906), II, i, 206. 



