§ 7. Vom Isochinolin ableitbare Alkaloide. 321 



berichtete im Anschlüsse an Untersuchungen von Lohmann (1) über ein 

 Delphocurarin aus dem Rhizom von D. bicolor (0,27%), Menziesii (0,35%), 

 Nelsonii (0,72%), scopulorum (1,3%); bei letzterer Art sind auch die Samen 

 alkaloidführend. Weitere Angaben (2) beziehen sich noch auf die amerikani- 

 schen Arten D. Geycri und glaucum, ohne bestimmteres über die hier vor- 

 kommenden Basen zu vermelden. Für Delphocurarin wurde die Zusammen- 

 setzung C23H33NO7 angegeben. Die Localisation der Delphiniumbasen in 

 den Geweben der Pflanzen hat für einige Arten Vanderlinden näher 

 studiert. 



Auch die Arten der Gattung Aconitum sind alkaloidführende Pflanzen. 

 Hier pflegt sich aber das meiste Alkaloid in den Wurzelknollen zu finden. 

 Die Alkaloide der Eisenhutarten sind in neuerer Zeit vornehmlich durch 

 die Arbeiten von Wright und Luff (3) besser bekannt geworden. Das als 

 Aconitin bezeichnete Alkaloid von Acon. Napellus (es ist noch festzustellen, 

 ob andere Basen als Nebenalkaloide vorkommen) ist krystallisierbar. Seine 

 Zusammensetzung wird verschieden angegeben. Dunstan und Carr (4) 

 schreiben die Aconitinformel C33H46NO1.2. Das Alkaloid zerfällt beim 

 Kochen mit alkoholischem KOH in Essigsäure, Benzoesäure und Aconin, 

 eine Base von der Zusammensetzung C24H38NOio- Es ist somit Acetyl- 

 benzoylaconin. Ob das Aconin mit einem Chinolinderivat zusammenhängt, 

 ist noch unbekannt. Aconitiri gibt' nach Dunstan und Carr (5) einen 

 charakteristischen roten krystallinischen Niederschlag mit KMnOi: Aconitin- 

 permanganat. Resorcin- Schwefelsäure erzeugt gelbrote Färbung (6). Im 

 Wasserstoffstrom auf 192** erhitzt liefert Aconitin das Pyraconitin von 

 Schulze und Liebner (7). Wenn man nach Carr (8) Aconitinpermanganat 

 gelinder Schwefelsäureeinwirkung unterwirft, so wird Acetaldehyd und die 

 Base Oxonitin C23H29NO9 gebildet. Wenn bei diesem Prozesse die N(CH3)- 

 Gruppe des Aconitins unversehrt geblieben ist, so kann die Formel von 

 Oxonitin in CioH9N02(CH3)(0 • CO • CgHg) • (0 • CO • CH3) (OCH3)3 auf- 

 gelöst werden. Aconin enthält nach Schulze (9) eine am N gebundene 

 CHg-Gruppe, sodann -vier Methoxylgruppen ; außer den an Essigsäure und 

 Benzoesäure gebundenen (OH)-Gruppen sind noch drei weitere (OH)- 

 Gruppen, wahrscheinlich alkoholischer Natur, vorhanden. 



Acon. paniculatum enthält nach Cleaver und Williams (10) in den 

 Blüten 0,9%, in den Blättern 0,1% Alkaloid, dessen Natur noch festzustellen 

 ist. Die Handelssorten der Napellusknollen pflegen 0,17— 0,28 %, Alkaloid 



1) Lohmann, Pflüg. Aich., 92, 398 (1902). — 2) F. W. Heyl, F. E. Hepner 

 u. LoY, Jouin. Amer. Chem. Soc, j5, 880 (1913). — 3) C. A. Wright, Bet. ehem. 

 Ges., 9, 1803. Wright u. A. P. Luff, Pharm. Journ. (3), 8, 164 (1877); Journ. 

 Chem. Soc. (1877), p. 143; Pharm. Journ. (3), 0, 150; Journ. Chem. Soc, .?.?, 161 

 (1878); 35, 387 u. 399 (1879). — 4) Dunstan, Pharm. Journ. (1894), p. 581. 

 Dunstan u. Carr, Chem. News, yi, 99 (1895). Dunstan u. W. H. Inge, Phaim. 

 Journ. (1891), p. 857. Dunstan u. Carr, Journ. Chem. Soc. (1893), I, 991; (1895), 

 I, 459. — 5) Dunstan u. Carr, Pharm. Joiun. (4), 2, 122 (1896). Aconitinbestira- 

 mung mit Silicowolframsäuie: H. Ecalle, Journ. Pharm, et Chim. (6), 14, 97 (1901). 

 Darstellung: Jürgens, Pharm. Ztsch. Rußl. (1885). — 6) N. Monti, Gazz. chim. 

 ital, j6, II, 477 (1906). Reaktionen: C. Reichard, Pharm. Zentr. Halle, 46, 479 

 (1905). Palet, Journ. Pharm. Chim. (7), 19, 295(1919). Krystallform: E. Schmidt, 

 Arch. Pharm., 247, 233 (1909). H. Schulze, Ebenda, 244, 136 (1906). — 



7) H. Schulze u. A. Liebner, Ebenda, 251, 453 (1913); 254, 567 (1916). — 



8) Fr. H. Carr, Journ. Chem. Soc, loi, 2241 (1912). 0. L. Brady, Ebenda, 103, 

 1821 (1913). Barger u. Field, Ebenda, 107, 231 (1915). — 9) H. Schulze, Apoth.- 

 Ztg., 20, 368 (1905); Arch. Pharm., 246, 281 (1908). — 10) Cleaver u. Williams, 

 Pharm. Journ. (3), 12, 722 (1882). 



Czapek, Biochemie der Pflanzen. 2. Aufl., III. Bd. 21 



