§ 7. Die als Gerbstoffe od^ als Gerbsäuren bezeichn. Phenol- u. Phenolsäurederivate. 503 



Direkte Fällung der Gerbstoffe durch Formol hat Franke (1) zur 

 Gerbstoffanalyse herangezogen. Nach Smith (2) ist Cinchoninsulfat ein 

 geeignetes Fällungsmittel in der Gerbstoffanalyse. Auch das Doppelsalz 

 von Zinkacetat und Natriumacetat kann als Fällungsmittel gut zu gebrauchen 

 sein (3). Eine bestimmt zusammengesetzte Mischung von neutralem Blei- 

 acetat und Essigsäure soll nach Manea (4) aus Gerbmaterialien nur Gallus- 

 gerbsäure fällen. 



Die Aufnahme von Jod läßt sich gleichfalls zur Gerbstoffbestimmung 

 heranziehen, doch hat man zu beachten, daß auf die adsorbierte Jodmenge 

 die Zeitdauer der Einwirkung nicht ohne Einfluß ist (5). 



Auch colorimetrische Verfahren hat man ausgearbeitet. Die Eisen- 

 reaktion wurde von DuRiEN und Jean (6) verwendet. Das Färbungsvermögen 

 bei Gerbstoffen nach Paessler zur Bestimmung heranzuziehen, ist nach 

 Nierenstein (7) nicht unbedingt geeignet. Zur Anwendung der Fehling- 

 schen Lösung für die Gerbstoffbestimmung hat Sonnenschein (8) fest- 

 gestellt, daß 1 g CuO 0,4126 g Tannin und 0,4245 g Traubenzucker entspricht. 

 Ob das von Feldmann (9) angegebene Verfahren Tanninlösung in Gegen- 

 wart von Indigolösung und Schwefelsäure mit Chlorkalk zu titrieren, Vor- 

 teile besitzt, ist mir aus eigener Erfahrung nicht bekannt. Möglicherweise 

 werden sich Verbesserungen der vorhandenen Methoden für exaktwissen- 

 Bchaftliche Zwecke noch durch passende Wahl der Extraktionsmittel: 

 Aceton: Trimble und Peacock(IO), erreichen lassen. Als Extraktions- 

 vorrichtung benutzt man in der Praxis derzeit meist den ,,PROCTERschen 

 Trichter", dessen Beschreibung in den einschlägigen analytischen Werken 

 zu finden ist. 



Nach Vaubel(11) kann man die Sauerstoff auf nähme in alkalischen 

 Gerbstofflösungen mit gutem Erfolge zur quantitativen Bestimmung ver- 

 wenden. Zur polarimetrischen Bestimmung lassen sich (rechtsdrehende) 

 Alkaloidsalze, die mit Gerbstoffen Niederschläge geben, wie Cinchonin- 

 sulfat, gebrauchen (12). 



Daß die Pentosenbestimmung in Gerbmaterial durch Phloroglucin- 

 abspaltung aus Gerbstoffen beträchthche Ungenauigkeiten verursachen 

 kann, sei nur nebenbei erwähnt (13). In Hinblick auf die Gerbstoffbestimmung 

 ist wohl in jedem einzelnen Falle eine möglichst eingehende Untersuchung 

 des zu verarbeitenden Materiales auf Säuren, Eiweiß, Zucker, aromatische 

 Bestandteile vorauszuschicken, ehe man die derzeit von der Gerbstoff- 

 chemie gelieferten Methoden zu physiologischen Zwecken verwenden kann. 

 Reiche Belehrung über die Methoden findet man in dem mehrfach zitierten 



1) H. Franke, Pharm. Zentr.Halle, 47, 599 (1906). — 2) H. L. Smith, The 

 Analyst, j5, 312 (1913). — 3) R. Lepetit, Collegium (1910), p. 375. — 4) A. Manea, 

 Chem. Zentr. (1906), I, 406. Wolframat-Zahl : A. T. Hough, Journ. Soc. Chem. 

 Ind., 33, 847 (1914). — 5) Jodierungsverfahren: Boudet, Bull. Soc. Chim. (3), J5, 

 760 (1906). H. Cornimboeuf, Ann. Chim. anal, appl., 12, 395 (1907). Gardner 

 u. HoDGSON, Pharm. Post, 47, 543 (1909). — 6) Durien, Arch. Pharm., 22, 323 

 (1884). Jean, Bull. Soc. Chim. (1885); 44, 183. Hinsdale, Ztsch. analyt. Chem., 

 30, 365 (1891). — 7) M. Nierenstein, Chem.-Ztg., jo, 1101 (1906). — 8) A. Sonnen- 

 schein, Dinglers polytechn. Journ., 256, 665 (1885). Kupfermethode: Gawalowski, 

 Ztsch. analyt. Chem., 54, 403 (1916). Dott, Journ. Soc. Chem. Ind., 34, 1124 

 (1916). — 9) P. Feld MANN, Pharm.-Ztg., 48, 265 (1903). — 10) Trimble u. Pea- 

 cocK, Chem. Zentr. (1893), II, 1003. Äthylacetat: J. R. Blockey, Collegium (1913), 

 p. 634. — 11) W. Vaubel u. 0. Scheuer, Ztsch. angew. Chem., 13, 2130 (1906). 

 — 12) A. W. Hoppenstedt, Collegium (1907), p. 279. — 13) W. Kelhofer, 

 Landw. Jahrb. d. Schweiz (1905), p. 49. J. L. VAN GiJN u. H. van der Waerden, 

 Collegium (1913), p. 639. 



