Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 769 



1917. Mazun: Thomas, Journ. Ind. Eng. Chem., 8, 821 (1916). Bac. coagulans: San- 

 DELiw, Zentr. Bakt., II, 4g. 115 (1919). Bact. iibaviense: Flatzek, Ebenda, I, 82, 

 234 (1918). Bact. casei: Burri u. Staub, Verh. Schweiz. Nat.Ges., 1917, Vers. Zürich. 

 p. 252 (1919). Gruppierung der Milchsäurebildner: Jensen, Zentr. Bakt., II, 44, 144 

 (1915). Kultur: Kufferath, Compt. rend. Soc. Biol., 83, 199 (1920). — Proteolyse: 

 GoRiNi, Accad. Lincei, II, 24, 369 u. 470 (1915). — Angebliche Milchsäurebildung 

 durch Schimmelpilze auf Saccharose: Vauvel, Ann. des Falsif., 6, 661 (1913). Sehr 

 zweifelhaft ist ein „Milchsäure bildendes Ferment" aus Lupinensamen: Muenk, Landw. 

 Vers.stat., 85, 393 (1914). — Tierische Milchsäurebildung: Levene u. Meyer, Journ. 

 Biol. Chem., 15, 65 (1913). Parnas u. Wagner, Biochem. Ztsch., 61, 387 (1914). Emb- 

 DEN u. Griesbach, Ztsch. physiol. Chem., gi, 251 (1914); pj, 1 u. 94 (1914); Zentr. 

 Physiol., 28, 738 (1914). Im Muskel wird nach Embden zugeführtes Kohlenhydrat 

 nicht direkt in Milchsäure übergeführt. Parnas, Zentr. Physiol., jo, 1 (1915). Fürth, 

 ßiochem. Ztsch., 6g, 199 (1915). Embden u. Laquer, Ztsch. physiol, Chem., g8, 181 

 (1917). Das milchsäurebildende Lactacidogen des Muskels ist identisch mit Hexose- 

 phosphorsäure. Embden u. Isaac, Ebenda, gg, 297. Elias u. Schubert, Biochem. 

 Ztsch., gc, 229 (1918). Meyerhof, Naturwiss. 1920, p. 696. — In angesäuertem Mais 

 i-Milchsäure gefunden: Dox u. Neidig, Ztsch. Gär.physiol., 3, 2bl (1913). — Milchsäure- 

 nachweis: als Guanidin- oder Chininlactat: Phelpe u. Palmer, Journ. Amer. Chem. Soc. 

 .79, 136 (1917). Thiophenreaktion: Fearon, Biochem. Journ., 12, 179 (1918). — Be- 

 stimmung: Bellet, Bull. Soc. Chim. (4), 13, 565 (1913). Yoshikawa, Ztsch. physiol. 

 Chem., 87, 382 (1913). Oppenheimer, Ebenda, 8g, 39 (1914). Wolf, Journ. of Physiol, 

 48, .341 (1914). Meissner, Biochem. Ztsch., 68, 175 (1915). Schneyer, Ebenda, 70, 

 294 (1915). Ohlson, Skand. Arch. Physiol., 33, 234 (1916). Szeberenyi, Ztsch. analyt. 

 Chem., 56, 505 (1917). Schuppli, Mitteil. Lebensraitt., 10, 44 (1919). Riesenfeld, 

 Biochem. Ztsch., 709, 249 (1920). — Milchsäuregärung von Zucker: Claflin, Orig. 

 Com. 8 th. Int. Congr. Appl. Chem. Append., 25, 343 (1913). — Konfiguration von 

 Glycerinsäure und Milchsäure: Freudenberg, Ber. chem. Ges., 47, 2027 (1914). — 

 Flüchtigkeit der Milchsäure: Hart u. Willaman, Journ. Amer. Chem. Soc, 35, 919 

 (1913). — Anregung durch Mg-Salze: Richet, Compt. rend., 161, 264 (1915). — Tempe- 

 ratur: Richet u. Cardot, Ebenda, 163 (1915). — Aciditätseinfluß: Reiss, Ztsch. Unt. 

 Nähr.. 31, 41 (1916). van Dam, Biochem. Ztsch., 87, 107 (1918). van Slyke u. Baker, 

 Journ. Biol. Chem., 35, 147 (1918). Svanberg, Med. Vet. Ak. Nobelinst., 5, Nr. 2 (1919). 

 Fischer, Journ. Exp. Med., 28, .529 (1918). Säuregrenze bei Ph 3,3—3,4: Svanberg, 

 Ztsch. techn. Biol., 7, 129 (1920); Ztsch. physiol. Chem., 108, 120 (1919); Dissert. Stock- 

 holm 1918. Streptococcus lactis hat ein flaches Optimum zwischen 5,5 und 6,4. Bei 

 6,5 — 6,8 tritt ein steiler Abfall ein. Bac. casei hat zwischen 5 und 6 ein lang gezogenes 

 Optimum und steilen Abfall bei 6 — 6,4. Fast das gleiche gilt für Bac. Delbrückii. — 

 Vorbehandlung mit saurem Phosphat führt zur Ausbildung eines Enzymsystems, 

 welches zur Kohlensäurebildung weiterführt: Euler, Ztsch. physiol. Chem., 100, 59 

 u. 148 (1917); Ebenda, 102, 176 (1918). 



p. 346. Zu Anm. 1 ist zu berichtigen, daß nach Herzog u. PIörth, Ztsch. 

 physiol. Chem., 60, 149 (1909), wohl zunächst aus dem Gärsubstrat ein racemischer 

 oder inaktiver Stoff gebildet wird, daß aber die optische Aktivität des Gärungsproduktes 

 nicht immer so zustande kommen muß, daß allein i-Milchsäure gebildet wird, von der 

 eine Modifikation elektiv verarbeitet wird. Es ist die optische Aktivität der entstandenen 

 Säure unabhängig vom Substrat und allein bestimmt von der Art des Gärungserregers. 

 — Zur Theorie der Milchsäuregärung: Neuberg u. Kerb, Biochem. Ztsch., 71, 245 

 (1915). — Überführung von Methylglyoxal in Milchsäure in tierischen Organen: Darin 

 u. Dudley, Journ. Chem. Biol., 14, 555 (1913). Levene, Ebenda, p. 551. Glyoxalase: 

 Dudley, Biochem. Journ., 9, 253 (1915). — Versuche mit Bac. Delbrückii: Euler u. 

 Bramer, Biochem. Ztsch., 76, 203 (1914). — Stimulation und Hemmung: Richet, 

 Compt. rend. Soc. Biol., 60, 455 (1906). Renon, Richet u. Lepine, Ebenda, 76, 396 

 (1914). — Gewöhnung an Gifte: Richet, Compt. rend., 158, 764 (1914); Rev. gen. de 

 Bot., 25 bis, 583 (1914); Ann. Inst. Pasteur, 31, 51 (1917); Compt. rend., 165, 491 (1917); 

 Compt. rend. Soc Biol., 81, 751 (1918). 



p. 347. Schleimgärung: Zettnow, Zentr. Bakt., I, 75, 374 (1914). Radl- 

 berger, Österr.-Ung. Ztsch. Zuckerind., 45, 347 (1916). Magnusson, Zentr. Bakt., 

 II, 48, 459 (1918V Smit, Fol. microbiol., 5, 41 (1917). — Citronensäuregärung: Bainier 

 o. Sartory, Bull. Soc Mycol, 2g, 137 (1913). Wehmer, Chem.-Ztg. (1912), p. 115; 

 (1913), p. 1393. Mc Dermott, Mycol. Zentr., 3, 159 (1913). 



p. 352. Invertin. Hefe-Invertin, Übersicht: Euler u. Lindner, Chemie der 

 Hefe und der alkoholischen Gärung, Leipzig 1915, p. 110. — Invertin aus Kojidiastase: 

 Bertrand u. Rosenblat, Ann. Inst. Pasteur, 27, 366 (1913). Apiculatushefe: Klöcker, 

 Compt. rend. Carlsber^, 10, 290 (1913). Brauerei hefen: Vandevelde, Vlamsche Nat. 

 en Geneeskund. Congr. 1913. Invertin aus Ecballium: Berg, Compt. rend. Soc. Biol., 

 Czapek, Biochemie der Pflanzen. 2. Aufl., III. Bd. 49 



