Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 773 



Mycol., 5, 633 (1913). Hefe bildet bei Ernährung mit organischen Säuren nach Bu- 

 KOMSKY, Zentr. Bakt., II, 42, 530 (1914), keine Zymase, wohl aber mehr Oxydase; 

 doch erlangt sie auf Zuckersubstrat das Gärvermügen wieder. Penicillium: Ravin, 

 Ann. sei. nat. Bot. (9), 18, (1914). — Brenztraubensäure und deren Spaltung durch 

 Carboxylase. Bei Hefe: Harden, Biochem. Journ., 7, 214(1913). Bacterien: Karczag 

 u. Moczar, Biochem. Ztsch., 55, 79 (1913). Schimmelpilze und Blütenpflanzen: Zaleski. 

 Ber. bot. Ges., 31, 349 (1913). — Neuberg, Biochem. Ztsch., 56, 497 (1913). Karczag, 

 Ebenda, 70, 317, 320 u. 325 (1915). Neuberg u. Rewald, Ebenda, 71, 122 (1915). 

 Boas, Zentr. Bakt., II, 44, 698 (1916). Karczag, Biochem. Ztsch., 84, 225 (1917). 

 Ketoglutarsäure: Neuberg, Ebenda, 71, 237 (1915). Fäulnisbacterien und Ketosäuren: 

 Neuberg, Ebenda, 67, 90, 122 (1914). Abt, Bull, Soc. Chim. Biol., i, 37 (1914). — Im 

 Tierkörper: Dakin u. Janney, Journ. Biol. Chem., 15, 177 (1913). Mayer, Biochem. 

 Ztsch., 55, 1 (1913). Bestimmung: Mac Lean, Biochem. Journ., 7, 611 (1913). — Gly- 

 oxalase: Dakin, Journ. Biol. Chem., 14, 423 (1913): 15, 463 (1913); Biochem. Ztsch., 

 59, 193 (1914). — Tartratvergärung: Ordonneau, Bull. Soc. Chim. (4), 9, 398 (1911). 



— Acroleinbildung aus Glycerin durch Bac. amaracrylicus: Voisenet, Compt. rend., 

 156, 1181, 1410 (1913); 158, 195 u. 734 (1914); Ann. Inst. Pasteur, 28, 807 (1914); 

 .72, 476 (1918). — Ameisensäurebildung im Organismus aus Glycerin: Salkowski. 

 Ztsch. physiol. Chem., 104, 161 (1919). — Unontbehrlichkeit von Glycerin für Bac. 

 tuberculosis: Armand-Delille, Journ. de Physiol., 15, 797 (1913). Lockemann, 

 Dtsch. med. Woch.sch., 45, 510 (1919). Glycerinernährung der Hefe: Bokorny, AUg. 

 Brau. u. Hopf.-Ztg., 56, 177 (1916). Bacterien: Müller-Thurgau, Landw. Jahrb. d. 

 Schweiz, 33, 313 (1919). — Palmitinsäure bei Hyalopus heterosporus: Härder, Zentr. 

 Bakt., II, 42, 27 (1914). — Glycin und Entstehung von Methylenulkohol: Hart u. 

 Lamb, Journ. Amer. Chem. Soc, j6, 2114 (1914). — Verarbeitung mehratomiger Al- 

 kohole: Neidig, Biochem. Bull., j, 82 (1913); Journ. Biol. Chem., j6, 143 (1913). — 

 Ausnutzung von Benzoesäure: Burri, Mitteil. Lebensmitt.Unt., 4, 259 (1913). Con- 

 delli, Staz. Sper. Agr. Ital., 47, 85 (1913). Phenole: Bokorny, Zentr. Physiol, 32, 

 55 (1917). CoNDELLi, Boll. chim. farm., 54, 353, (1915). Schroeder u. Thomas, Ztsch. 

 physiol. Chem., loi, 262 (1918). Amygdalin: Waterman, Proc. Acad. Amsterdam, 

 19, 922 u. 987 (1917). Phloridzin: Boas, Zentr. Bakt., II, 44, 700 (1916). Inosit: HuL- 

 ton-Frankel, Journ. Infect. Diseas., 23, 380 (1918). Phytol für Basidiobolus unbrauch- 

 bar: Raciborski, Kosmos, Lemberg, 38, 1657 (1913). — Gerbstoff: Trotman, Journ. 

 Soc. Chem. Ind., 32, 1055 (1913). — Hippursäure: Kossowicz, Biochem. Ztsch., 67, 

 391 (1914). Guanidinsalze und Kaliumrhodanid dienen nicht als Kohlenstoffquellen 

 für Schimmelpilze. Pepton für Hyphorayceten wenig geeignet: Traaen, Nyt Mag. 

 Nat. Kristiania 1914. Für Leuchtbacterien dienen die Basen des Fleisches als C- und 

 N- Quellen: Fuhrmann, Naturwiss., 2, 232 (1914). Saponine verwendbar: Solacola, 

 Compt. rend. Soc. Biol., 24, 304 (1913). 



p. 389. Kohlenhydrate bei Algen. Glykogen bei Chlorella luteoviridis: Kuffe- 

 rath, Rec. Inst. Bot. L. Errera, 9, 113 (1913). Prat, Biol. Listy, 6, 185 (1917), fand 

 Glykogen in einigen Cyanophyceen, Chlorella und Batrachospermum. Die „Anabaenin- 

 körner" von Porphyridium cruentum geben nach Staehelin, Ber. bot. Ges., 34, 893 

 (1916), bei der Hydrolyse Glykogen. — Kein reduzierender Zucker bei Chlorophyceen 

 und Florideen, wohl aber bei Braunalgen: Pantanelli, Ber. bot. Ges., 32, 550 (1914). 



— Fucusschleim, Mannit: Segers-Laureys, Rec. Inst. Bot. L. Errera, 9, 81 (1913). 

 Kylin, Ztsch. physiol. Chem., 94, 337 (1915), fand Mannit bei Laminaria, Ascophyllum, 

 Fucus. Bei Rhodymenia Trehalose, ebenso bei Bangia, Chondrus, Porphyra. Florideen 

 führen keine Monosaccharide, keinen Rohrzucker, keine Maltose, Glucose nur in Spuren. 

 Laminariose bei Fucoideen ist wahrscheinlich ein neues Disaccharid. Über Laminarin 

 vgl. Kylin, Ztsch. physiol. Chem., im, 236 (1918). Dasselbe beträgt bei Laminaria 

 bis zu 34% des Trockengewichtes. Florideen scheinen keinen Mannit zu enthalten. 

 Rhodymenia führt bis gegen 15% Trehalose. Bei Chlorophyceen kein Mannit. Ulva 

 enthält wahrscheinlich Dextrose, keine Saccharose. Letztere aber wahrscheinlich in 

 Cladophora. Daselbst auch vielleicht ein inulinartiger Körper. — Doflein, Zool. 

 Jahrb., 41, 1 (1919); Biol. Zentr., 36, 439, nennt ,,Zuckcrflagellaten" jene Formen, die 

 wie Polystomella agilis Stärke als Stoffwechselprodukte bilden, Zucker aber aus an- 

 organischen Materialien nicht bilden können. — Algenkohlenhydrate ferner: Hoag- 

 land u. Lieb, Journ. Biol. Chem., 23, 287 (1915). Beckmann u. Bark, Sitz.ber. preuß. 

 Akad. Berlin 1916, p. 1009. Oscillaria: Turner, Journ. Amer. Chem. Soc, 38, 1402 

 (1916). — Braunalgen: Lapicque, Compt. rend., 169, 1426 (1919). — Amylase der Rot- 

 algen: Bartholomew, Bot. Gaz., 57, 136 (1914). — Kulturversuche mit Algen: Hoff- 

 mann- Grobety, Bull. soc. bot. Geneve, (2), 4 (1912). Chodat, Monographies d'Algues en 

 Culture Pure, Berne 1913. Plümecke, Ber. bot. Ges., 31, 131 (1913), für Gonium, die 

 Bedeutung organischer Nahrung. Desgleichen für Porphyridium: Kufferath, Bull, 

 soc. bot. Belg., 52, 286 (1913). Haematococcus: Pringsheim, Beitr. Biol. d. Pfl., 12, 



