774 Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 



413 (1914). Blaualgen: Maertens, Dissert. Halle 1914. Härder, Ztsch. f. Bot., 9, 

 145 (1917). Glade, Ztsch. Naturwiss., 86, 40 (1915). Zoochlorellen aus Spongilla: 

 LiMBERGER, Sitz.ber. Wien. Akad., I, 127, 395 (1918). Spirogyra: Bokorny, Hedwigia, 

 5g, 340 (1918). Gomontia lignicola, eine Holz durchbohrende Alge: Moore, Ann. 

 Missouri Bot. Gard., 5, 211 (1918). Zuckeraufnahme durch Flechtengonidien: Sta- 

 BiNSKA, Publ. Inst. Bot. Geneve (8), 11. H. (1914). Zu Pxjtters Theorie der Ernährung 

 der Seetiere durch organische wasserlösliche Stoffe: Henze, Pflüg. Arch., 123, 478 

 (1908). Pütter, Ztsch. allg. Physiol., 7, 283 (1907). Definierte Nährlösung für Para- 

 maecium: Peters, Journ. of Physiol., 53, CVIII (1920). — Flechten: Über den Ery- 

 thrit: 0. Hesse, Journ. prakt. Chem., g2, A2b (1915). Parmelia: Keegan, Chem. News, 

 114, 74 (1916). Salkowski, Ztsch. physiol. Cham., 104, 105 (1918). 



p. 395. Moose. Saccharose in Sphagnum und Hypnum: Goris u. Vischniac, 

 Bull. sei. pharm., 2n, 390 (1913). Stärkespeicherung und Stärkeumsatz bei Bryophyten: 

 Rancken, Act. soc. faun. et flor. fenn., J9, Nr. 2, Helsingfors 1914. Andreaea und 

 Frullania erzeugen keine Stärke. Inulin bei Scapania. Nach Mason, Not. Bot. School 

 Trin. Coli. Dublin, II, p. 319 (1916). Sei. Proc. Dublin Soc, ^5, 13 (1916), sind Dextrose, 

 Lävulose und Saccharose bei Moosen verbreitet, Maltose, wo immer Stärke vorkommt. 

 Saccharose entsteht bei Belichtung zuerst in den Chloroplasten. — Kultur und künst- 

 liche Ernährung bei Moosen: Servetta?, Ann. sei. nat. (9), 17, 111 (1913). UiascH, 

 Ber. bot. Ges., jj, 543 (1913). — Farnpflanzen: in Selaginella lepidophylla 2,5% Tre- 

 halose nach Anselmino u. Gilg, Ber. dtsch. pharm. Ges., 23, 326 (1913); bei anderen 

 Arten kein solcher Befund. — Zuckerarten in ruhenden Samen. In Leinsamen fand 

 van Kampen, Chem. Weekbl., 11, 142; Landw. Vers.stat., 83, 471 (1914), Glucose, 

 besonders in der Epidermis, weniger in den inneren Teilen der Samen. Zuckerbestim- 

 mung im ruhenden Gerstenkorn: Kluyver, Dissert. Delft 1914: Raffinose und Saccha- 

 rose gefunden. Für Maiskeime Winterstein u. Wünsche, Ztsch. Physiol. Chem., 

 g5, 310 (1915). In den Samen von Corchorus capsularis 2,5% Raffinose nach Annett, 

 Biochem. Journ., 11, 1 (1917). 



p. 399. Stärke. Darstellung aus Roßkastanien: Wischo, Ztsch. allg. österr. 

 Apoth.Ver., sy, 49 (1919). Allgemeines: Pringsheim, Die Polysaccharide, Berlin 1919. 

 • — Zählung der Stärkekörner, Bestimmung ihres Einzelgewichtes: Hartwioh u. Wich- 

 mann, Arch. Pharm., 250, 452 (1912). Mikroskopische Färbung: Schütz u. Wein, 

 Chem.-Ztg., 39, 143 (1915). Blunck, iZtsch. wiss. Mikr., jx, 476 (1915). Hanausek, 

 Arch. Chem. u. Mikr., 3 (1915). Unna, Ztsch. Unt. Nähr., 36, 49 (1918). Spaltenbildung 

 in konzentrierten Lösungen: Reuss, Ztsch. Unt. Nähr., 32, 269 (1916). Mechanische 

 Beschädigung: Scheffer, Ztsch. ges. Getreidewes., 11, 41 (1919). — Schichtung und 

 Vergleich mit LiESEOANG-Ringen: Küster, Ber. bot. Ges., 31, 339 (1913). Struktur 

 und diagnostischer Wert: Harvey, Lilly Sei. Bull. Ser. I, Nr. 5, p. 194 (1914). — Eiweiß- 

 gehalt: MOSER, Ztsch. Hyg., 83, 113 (1917). Aschengehalt: Verkade, Chem. Weekbl., 

 15, 427 (1918). Verkleisterungstemperatur: Dox u. Roark, Journ. Amer. Chem. Soc, 

 39, 742 (1917). Francis u. Smith, Journ. Ind. Eng. Chem., 8, 509 (1916). Herter 

 u. Meyer, Ztsch. ges. Getreidewes., 12, 43 (1920). — Pseudokrystalle von Stärke, 

 Entflockung: Malfitano u. Moschkoff, Compt. rend., 156, 1412 u. 1681 (1913). Stärke- 

 gallerten: Meyer, KoUoidchem. Beih., 5, 1 (1913). Samec u. Hoefft, Ebenda, p. 141 

 (1913), legen die Analogie dar für Altern, Lösung und Entaschung, denen allen Ver- 

 armung an Elektrolyt, Phosphat-Ion, zugrundeliegt. Erst gequollene Stärke gibt 

 Elektrolyte reichlich ab. Elektrolytgehalt und Fällung löslicher Stärke: Mattill, 

 Biochem. Bull., 2, 553 (1913). Verschiebungen des Phosphatgehaltes bei den Zustands- 

 änderungen und dem Abbau der Stärke: Samec, Anzeig. Wien. Akad., 12, 261 (1914); 

 KoUoidchem. Beih., 6, 23 (1914). Beim Verquellen mit KOH entsteht ein P-haltiger 

 und ein P-freier Anteil; beim diastatischen Abbau P-haltige Dextrine, die mit Wasser 

 gekocht unter Abgabe von PO4 gespalten werden. Vgl. auch Samec, Ztsch. physik.chem. 

 Biol., I, 173 (1914). Amylopektin wäre ein Amylose-Phosphatkomplex, Amylose das 

 P-freie Kohlenhydrat. — Über die Amylophosphorsäure: Northrop u. Nelson, Journ. 

 Amer. Chem. Soc, j5, 472 (1916). Künstliches Präparat: Kerb, Biochem. Ztsch., loo, 

 3 (1919). Über Alkalistärke: Samec. KoUoidchem. Beih., 8, 33 (1916). Die Veränderungen 

 beim Altbackenwerden des Brotes: Katz, Ztsch. physiol. Chem., g5, 104, 136 u. 147 (1915). 

 Verschaffelt, Ebenda, p. 130. — Stärkelösungen: Ericson, Svensk. Pharm. Tidskr. 

 (1916), p. 499. Sallinger, Kolloid-Ztsch., 25, 79 (1919). Über Altern derselben Sal- 

 LiNGER, Ebenda, p. 111. — Adsorption bei Stärke: Rakowski, Journ. russ. phys.chem. 

 Ges., 45, 13 (1913). — Jodstärke wird durch Pukallfilter nicht hindurchgelassen: 

 Bariurasulfat reißt Jodstärke nieder, Stärkelösung nur schwer: Vanino u. Schinner, 

 Arch. Pharm., 253, 47 (1915). Blaue Adsorptionsverbindungen von Jod: Barger u. 

 Starling, Journ. Chem. Soc, 107, 411 (1915). Hemmung der Jodstärkebildung: 

 Clementi, Arch. di farm., 20, 258 (1915). Jodionen zur Blaufärbung nicht nötig: 

 Berczeller, Biochem. Ztsch., 84, 106 (1917). Entfärbung durch Licht: Bordier, 



