496 Siebzehntes Kapitel: Der EohlenhydratstoffwechBel bei phanerogamen Pflanzen. 



Über die Reservestoffablagerungen bei Holoparasiten sind wir 

 durch Heinricher (1) für Lathraea clandestina und Squamaria näher 

 unterrichtet. In dem großzelligen Rindenparenchym der Lathraea 

 clandestina-Haustorien sind meist viele Stärkekörner vorhanden, die sich 

 gewöhnlich mit Jod rein blau färben, jedoch öfters auch einen rötlichen 

 Ton bei der Jodreaktion geben. In dem Tracheiden führenden zentralen 

 Teil findet sich oft reichlich kleinkörnige Stärke, die sich mit Jod rein rot 

 färbt. Lathraea Squamaria enthält die erwähnte Rindenstärke nicht, wohl 

 aber die kleinkörnige jodrötende Form. Bemerkenswert ist es, daß eine ganze 

 Reihe von chlorophyllfreien und chlorophyllhaltigen saprophytischen Phanero- 

 garaen, wie unter den Orchideen Epipogon, Limodorum, Goodyera, Ma- 

 laxis u. a., femer Gentianaceen, wie Sweertia, Cotylanthera (2) kleine 

 Stärkekörner, die sich mit Jod rot färben, in reichlicher Menge enthalten. 

 Über die Stärkespeicherung im Rhizom von saprophytischen Erdorchideen, 

 Coralliorhiza, hat Mac Dougal(3) Mitteüungen gemacht, und der Stärke- 

 gehalt des unterirdischen Stammes und anderer Teile der Neottia Nidus 

 wurde bereits durch Drude (4) festgestellt. Monotropa Hypopitys enthält 

 nach Russow(5) jodrötende Stärke. Nach W. Magnus (6) führen im 

 Wurzelsystem der Neottia selbst die von dem endotrophen Mycorrhiza- 

 pilz bewohnten Zellen der Rinde oft kleinkörnige Stärke. Neottia neigt 

 sehr stark zur vegetativen Vermehrung, so daß diese Stärkevorräte eine 

 physiologische Notwendigkeit darstellen (7). Für die Orobanchen und 

 verwandte Parasiten fehlen Angaben. 



Die Aufnahme der Kohlenhydrate durch alle diese parasitisch 

 und saprophytisch lebenden Pflanzen ist ein schwieriges experimentelles 

 Problem und erst in wenigen Punkten einigermaßen bestimmbar. In 

 neuerer Zeit ist die bereits durch Frank (8) geäußerte Ansicht, daß die 

 mit endotropher Mycorrhiza ausgerüsteten Saprophyten durch die Ver- 

 dauung der Pilzhyphen und Resorption der aus den zugrundegehenden 

 Teilen des Mycels gelieferten KohlenstofEverbindungen mindestens einen 

 wesentlichen Teil ihres Kohlenstoffbedarfs decken, durch W. Magnus 

 und Shibata(9) sehr wahrscheinlich gemacht worden. Doch sind wir 

 weit davon entfernt, einen einigermaßen befriedigenden Einblick in den 

 Chemismus dieser Vorgänge zu besitzen, nachdem einstweilen vorzüglich 

 morphologische Methoden zur Untersuchung dieses Problems heran- 

 gezogen worden sind. Die ektotrophe Mycorrhiza scheint nach den 

 Untersuchungen von Stahl (10) keine Bedeutung für die Kohlenstoff- 

 gewinnung aus dem Humussubstrate zu besitzen, sondern vor allem 

 einen Ersatz für die mangelhafte Wurzelhaarbildung darzustellen. 



1) Heinricher, Beitr. Biol. d. Pfl., 7, 342 (1896). — 2) Figdor, Ann. jard. 

 botan. Buitenzorg, 14, 224 (1896). — 3) Mac Dougal, Contrib. New York. Botan. 

 Qard. (1899). Symbiose and Saprophytism, p. 520. — 4) Drude, Biol. v. Monotropa 

 u. Neottia (1873). — 5) Russow, Auskleidung d. Intercellularen. Sitz.ber- Dorpater 

 Naturf. Ges., 7, I (1884). Drudes „Monotropin" ist wohl mit der jodrötenden Stärke 

 identisch. — 6) Wern. Magnus, Jahrb. wias. Botan., 35, II (1900). — 7) Vgl. 

 J. Peklo, Flora, 9Ö, 260 (1906). — 8) A. B. Frank, Ber. Botan. Ges.. 9 (1891). 

 — 9) SmBATA, Jahrb. wiss. Botan., 37, 644 (19(^). — 10) Stahl, Ebenda, 34> 

 IV (1900). 



