786 Neunundzwanzigstes Kapitel: Sterinolipoide der Pflanzen. 



alkoholischem KOH verseift, sodann das Verseifungsgemisch in Äther 

 eingießt und die Tclare Mischung mit Wasser bis zur Abscheidung der 

 Ätherphase versetzt; im Äther hat man nun das Cholesterin: Leider ge- 

 winnt man auf diese Weise keine Einsicht ob ursprünghch Sterin- Fettsäure- 

 ester vorlagen oder nicht. Ein Verfahren zur Trennung der Ester fehlt noch. 



Man kann zur Reinigung der Präparate noch die Überführung in Chole- 

 sterinbezoylester benützen, Stoffe, welche als „flüssige Krystalle" oder 

 anisotrope Flüssigkeiten sehr interessant sind [Reinitzer(I)]. 



Die reinen Phytosterine sind in Wasser unlösHch, löshch in heißem 

 Alkohol, Äther, Petroläther, Chloroform. Durch langsames Eingießen der 

 Acetonlösung in Wasser stellten Porges und Neubauer (2) eine haltbare, 

 nach vöUiger Entfernung des Acetons etwa 0,2% Cholesterin enthaltende 

 Emulsion dar, welche typisch das Verhalten von Suspensionskolloiden 

 zeigte, durch Säuren ausgeflockt wurde und irreversible Salzfällungen 

 gab. Doch erinnert Cholesterin durch seine Quellbarkeit in Wasser und 

 die hohe Capillaraktivität der Emulsion [Czapek (3)] wieder an lyophile 

 Kolloide. Mit den Phosphatiden teilen die Cholesterinkörper auch die starke 

 Aufnahme von Sauerstoff aus der Luft, besonders bei Belichtung. Hierbei 

 erniedrigt sich der Schmelzpunkt, manche der zu erwähnenden Farbenreak- 

 tionen bleiben aus, und die Präparate färben sich gelb (4). Lifschütz (5) 

 wies nach, daß es sich um die Bildung von Oxydationsprodukten handelt, 

 vielleicht eines zweiatomigen Alkohols, der durch Zinkstaub wieder in 

 Cholesterin zurückzuführen ist, ferner um eine Dicarbonsäure (ChoUan- 

 säure). Beide Stoffe sollen im Wollfett natürUch vorkommen, Oxycholesterine 

 auch in Blut und Knochenmark, nach Unna (6) auch im Sekrete der Knäuel- 

 drüsen und Talgdrüsen der menschlichen Haut, Man kann sie quantitativ 

 auf spektrometrischem Wege bestimmen. Bei Pflanzen sind Oxyphyto- 

 sterine noch nicht, nachgewiesen. 



Die Cholesterine geben (mehr minder vollständig) eine Reihe von 

 praktisch wichtigen Farbenreaktionen: 



1. Reaktion von Salkowski-Hesse (7). Eine Lösung von Phyto- 

 sterin in Chloroform wird mit dem gleichen Volum H2SO4 (1,76 

 spez. Gew.) geschüttelt: blutrote Färbung. 



2. Cholestolprobe nach Liebermann (8): Man versetzt eine (wenn auch 

 sehr verdünnte) Lösung von Phytosterin in Essigsäureanhydrid 

 tropfenweise unter Kühlung mit konz. reiner HgSO«: Violettfärbung, 

 die bald in ein sattes Grün übergeht. Gegenwart von Wasser ist 

 zu vermeiden. Eine Anzahl phytosterinartiger Stoffe zeigt diese 

 typischen Färbungen nicht. 



1) F. Reinitzer, Monatsh. f. Chem., p, '421. Obermtjller, Ztsch. physiol. 

 ehem., 15, 42 (1890). E. Schulze, Ztsch. analyt. Chem., r?, 173 (1878). R. Schenck, 

 Ztsch. Elektrochera., //, 951 (1905). Ferner P. Gaubeet, Compt. rend., 145, 722 

 (1907); 149, 608 (1909); 156, 149 (1913), für die flüssigen Krystalle anderer Chole- 

 sterine. Schraubige Einrollungen bei Cholesterin: Gaubert, Chem. Zentr. (1910), /, 

 1000. — 2) O. Porges u. E. Neubauer, Biochem. Ztech., 7, 152 (1907); Wien, 

 klin. Woch.schr. (1907), p. 1285. — 3) Czapek, Methode z. direkten Oberflächen- 

 spannungsbestimm, d. Plasmahaut (Jena 1911), p. 67. Vgl. auch S. Loewe, Biochem. 

 Ztsch., 42, 207 (1912). — 4) Schulze u. Winterstein, Ztsch. physiol. Chem., 43, 

 316 (1904); 48, 546 (1906). — 6) J. Lifschütz, Ebenda, 50, 436 (1907); 3S, 175 

 (1908); Biochem. Ztsch., 48, 373 (1913). — 6) Unna u. Golodetz, Biochem. Ztsch., 

 20, 496 (1909). Schreiber u. Lenard, Ebenda, 49, 458 (1913). — 7) E. Sal- 

 KOWSKi, Pflüg. Arch., 6, 207 (1872). O. Hesse, Lieb. Ann., 211, 273 (1878). — 

 8) C. Liebermann, Ber. Chem. Ges., 18, 1803 (1885). Burchard, Diss. (Rostock 



