§ 1. Allgemeines. 805 



Carotin und Xanthophyll durch die Tracht der Krystalle, die Schnelligkeit des 

 Eintrittes der H2SO4- Reaktion u. a. Reaktionen, genügend scharf neben- 

 einander nachweisen. Ferner ist Carotin selbst in dünner Schicht rot gefärbt, 

 Xanthophyll jedoch gelb. Der Schmelzpunkt hegt bei Carotin bei 167,5 bis 

 168", bei Xanthophyll bei 172®. Carotin ist ferner im Gegensatze zu Xantho- 

 phyll sehr löshch in niedrig siedendem Petroläther und kaltem CSg, sehr 

 wenig löshch in kaltem Alkohol und Aceton; im letzteren löst sich Xantho- 

 phyll leicht. Beide Stoffe kennzeichnen ?ich durch die Bildung von Di- 

 Jodadditionsprodukte als ungesättigte Verbindungen mit einer Doppel- 

 bindung. Optisch aktiv ist keiner von beiden; von den Farbenreaktionen 

 der Sterine gehngt keine einzige. An der Luft sind beide Pigmente stark 

 autoxydabel; die Gewichtszunahme durch Sauerstoffaufnahme kann 30 bis 

 40% betragen. Dabei bleicht die Farbe rasch aus. Auch dann ist nie eine 

 der Cholesterinreaktionen aufzufinden; frühere Angaben in positivem Sinne 

 erklären sich durch die Benützung phytosttrinhältiger Präparate. 



Beide Farbstoffe lösen sich in konzentrierter HoSO mit indigoblauer 

 Farbe. 



Xanthophyll enthält nach seinen Reaktionen v/eder eine OH- noch 

 eine CO-Gruppe und ist keine Säure. Die alkoholischen Lösungen beider 

 Stoffe zeigen ein Absorptionsspektrum, welches aus zwei breiten Bändern 

 im Indigoblau und einer Endabsorption besteht. Die Lage der Absorptions- 

 bänder ist nach Willstätter und Mieg: 



bei Carotin IX 488—470//;* II 456— 438 //u 



„ Xanthophyll .... IX 480-470 „ II 453-437 ,; (1). 



Bekanntlich krystallisiert Möhrencarotin in den Parenchymzellen der 

 Wurzel spontan in stab- oder dreieckförmigen verzogenen Bildungen aus. 

 ScHiMPER (2) hat nachgewiesen, daß die Krystalle durch ihren Zusammen- 

 hang mit den Leukoplasten, in welchen sie ausgeschieden werden, abnorme 

 Formverhältnisse (Zwangs- oder Hemmungsbildungen) erfahren. 



Künstlich kann man die Chromolipoide innerhalb der Zelle durch 

 verschiedene Methoden krystallisiert in situ nachweisen. Man hat dazu 

 benützt: Einwirkung verdünnter Säuren (3), Einlegen in starke Kahlösung 

 in verdünntem Alkohol (4), konzentrierte Resorcinlösung (5) usw. Sehr 

 einfach ist die Benützung verdünnten Alkohols (30%), konzentrierter 

 Phenylurethanlösung oder anderer capillaraktiver Lösungen passender 

 Konzentration (6). Tammes (7) hat diese Methoden benützt, um die all- 

 gemeine Verbreitung carotinartiger Farbstoffe im Pflanzenreiche zu illu- 

 strieren. Doch ist TswETT (8) in seiner kritischen Würdigung der erwähnten 

 Methodik ganz im Recht, wenn er darauf aufmerksam macht, daß man 

 keinen Grund habe, von Carotinnachweis hierbei zu sprechen. Mikroskopisch 

 lassen sich, wie erwähnt, die einzelnen Chromohpoide voneinander nach 

 VAN WissELiNGH durch die Krystallform und die Eintrittsgeschwindigkeit 

 der Bläuung mit H2SO4 unterscheiden. 



1) Vgl. auch MoNTEVERDE, Acta Hort. Petropol., 13, 151 (1893). — 2).Schimper, 

 Jahrb. wiss. Botan. (1885). A. Guilliermond, Compt. rend., 155, 411 (1912). — 

 3) TscHiRCH, Untersuch, über d. Chlorophyll. (1884). R Frank, Botan. Zentr., 10 

 (1882). — 4) Molisch, Ber. Botan. Ges., 14,^8 (1896)..— 5) Tswett, Botan. Zentr., 

 8t, 83 (1900). — 6) E. Liebaldt, Ztech. Botan. (1913), p. 65. Vgl. auch Tunmann. 

 Pharm. Ztg., 50, 1055 (1905). — 7) Tine Tammes, Flora, 87, 205, 244 (1900). — 

 8) Tswett, Ber. Botan. Gee., 29, 630 (1911). 



