§ 12. Die übrigen Pflanzensäuren. 95 



vorkommt und Lippmann (1) fand Mesoxafsäure und Tartronsäure in 

 Zuckerfabrikationsabfällen. Das mesoxalsaure Baryum hat etwa denselben 

 Barytgehalt wie das Baryummalat, doch zersetzt sich Mesoxalsaure leicht 

 unter COa-Entwicklung und ist in Äther gut löslich, was für die Äpfelsäure 

 nicht zutrifft. Mesoxalsaure ist Ketomalonsäure und die einfachste zwei- 

 basische Ketosäure. Da es sich nur um isolierte Befunde handelt, so läßt 

 sich nichts über die biochemische Bedeutung und Herkunft dieser bemerkens- 

 werten Säure sagen. Sie könnte mit der Gruppe des Glyoxals und der Brenz- 

 trau jensäure genetisch zusammenhängen. Alle Aldehydo- und Ketosäuren 

 geben nach Mandel und Neuberg (2) die Farbenreaktion mit Naphtho- 

 resorcin und H2SO4. Auf die biochemische Bedeutung der Brenztrauben- 

 säure CHg • CO • CO2H, die von Hefe aus Zucker tatsächlich gebildet wird (3), 

 wird an anderer Stelle näher eingegangen werden. 



Die Säuren der Essigsäurereihe sind in kleinen Mengen in den ver- 

 schiedensten Pflanzen und Pflanzenorganen als häufige und regelmäßig 

 erscheinende Stoffwechselprodukte nachgewiesen. Ihre Entstehung kann 

 sicher in der heterogensten Weise zustande kommen. Sehr lehrreich hierfür 

 sind die Verhältnisse bei Bacterien, welche die Glieder der Essigsäurereihe in 

 mannigfachen Spaltungsprozessen aus Zucker und Kohlenhydraten sowohl, 

 wie aus Eiweißstoffen zu erzeugen vermögen. Bei den höheren Pflanzen sind 

 auch einzelne Stoffwechselprozesse, welche zur Bildung von niedrigen und 

 höheren Gliedern dieser Reihe führen, sehr verbreitet. Die älteren Angaben 

 über Auffindung von Ameisensäure in Organen höherer Pflanzen hat Berg- 

 mann (4) zusammengestellt. Nach diesem Forscher ist Ameisensäure ein 

 sehr allgemein verbreitetes Stoffwechselprodukt. Ameisensäure findet sich 

 nach den Angaben von Curtius und Franzen (5) regelmäßig in den Laub- 

 blättern vor. In Früchten ist sie häufig zu finden: bei Sapindus saponaria, 

 Tamarindus indica nach Gorup-Besanez (6), Ceratonia siliqua (Redten- 

 bacher) (7), in unreifen Beeren von Juniperus communis (Aschoff) (8), 

 unreifen Trauben (Erlenmeyer) (9), in Ginkgo biloba (Bechamp) (10), 

 Arctostaphylos uva ursi Ssanotzky) (11), in Tannennadeln und im Kraute 

 von Urtica (Gorup) (12), in Himbeeren (Röhrig) (13), in der Frucht von 

 Brucea antidysenterica (Power und Salway) (14), im Milchsafte von Bassia 

 latifolia nach Heckel und Schlagdenhauffen (15), anscheinend verbreitet 

 in Wurzelspitzen (Goebel, Czapek) (16); im Safte von Sorghum sacchara- 

 tum (Wiley und Maxwell) (17). Bergmann wies ferner Ameisensäure 

 in Vaucheria nach. Von Pilzen wurde das Mutterkorn als ameisensäure- 

 haltig angegeben (Mannassewitz) (18). Rodewald und Reinke(19) 



1) E. 0. V. Lippmann, Ber. ehem. Ges., 46, 3862 (1913). Über Tartron- 

 säure: R. Behbend u. A. Prüsse, Lieb. Ann., 416, p. 233 (1918). — 2) J. A. 

 Mandel u. Neuberg, Biochem. Ztsch., ij, 148 (1908). — 3) Fernbach u. Schoen, 

 Compt. rend., 157, 1478 (1913). — 4) E. Bergmann, Bot. Ztg. (1882j, p. 731. — 

 5) Curtius u. Franzen, Lieb. Ann., 390, 89 (1912). Ber. ehem. Ges., 45, 1716 

 (1912). Sitz.ber. Heidelberger Akad. 1910 u. 1912. — 6) Gorup-Besanez, Lieb. 

 Ann., 60, 369; 162, 219. — 7) Redtenbacher, Ebenda, 57, 177. — 8) Aschoff, 

 Arch. Pharm., 40, 272. — 9) Erlenmeyer, Ber. ehem. Ges., 10, 634 (1877). — 

 10) BÄCHAMP, Ann. Chim. et Phys. (4), /, 288 (1864). — 11) Ssanotzky, Chem. 

 Zentr. (1893), II, 1096. — 12) Gorup-Besanez, Journ. prakt. Chem., 48, 191. — 

 13) A. Röhrig, Ztsch. Unt. Nähr. u. Gen.mitt., 19, 1 (1910). — 14) Fr. B. Power 

 u. Salway, Pharm. Journ., 79, 126 (1907). — 15) Heckel u. Schlagdenhauffen, 

 Compt. rend., 107, 949. — 16) Goebel, Pflanzenbiolog. Schild., 2, 211 (1891). 

 Czapek, Jahrb. wiss. Bot., 29, 336 (1896). — 17) Wiley u. Maxwell, Araer. 

 Chem. Journ., 12, 216 (1890). — 18) Mannassewitz, Journ. f. Pharm. 1807. 

 Für Pilze auch E. Herrmann, Chem.-Ztg., 37, 206(1913). — 19) Reinke u. Rode- 

 wald, Stud. üb. d. Protoplasma (1881), p. 32. Bildung bei Hefe in amidhaltigem 

 Nährboden; P. Thomas, Ann. Inst. Pasteur, 34, 162 (1920). 



