§ 1. Die AnaerobioBe. 165 



Wie empfindlich manche Anaerobenformen gegen plötzliche Ein- 

 wirkung von Luft sein können, geht besonders aus den Versuchen von 

 Bachmann (1) hervor, der zeigte, daß die vegetativen Zustände von 

 Bac. araylobacter, Bac. botulinus, Paraplectrum foetidum schon nach 

 10 Minuten langer Lufteinwirkung nicht nur ihr Wachstum einstellen, 

 sondern getötet werden. Die Sporen verloren ihre Keimfähigkeit nach 

 Stägigem Aufenthalt an der Luft. 



JuNGANO und DiSTASo(2) haben eine Zusammenfassung der ver- 

 schiedenen anaeroben Bacterienformen geliefert. 



KiTASATO und Weyl (3) haben gezeigt, daß oxydierende Stoffe wie 

 chromsaure Alkalisalze, Chlorate, Jodate den Anaeroben bereits in Konzen- 

 trationen schädlich werden, welche Aerobe noch nicht im mindesten be- 

 einträchtigen. Darauf wären wohl anschauliche Demonstrationsversuche 

 zum Nachweise von Anaeroben zu gründen. Meist benutzt man hierzu die 

 später zu erwähnende Entfärbung verschiedener Farbstoffe. 



Auf die Technik der Anaerobenkultur einzugehen, ist hier nicht unsere 

 Aufgabe, dieselbe wird in den Hand- und Lehrbüchern der Mikrobiologie 

 ausführlich behandelt, z. B. von Omeliansky (4), und muß von jedem be- 

 herrscht werden, der sich mit biologisch-chemischen Untersuchungen be- 

 fassen will. Den weitgehendsten Anforderungen wird die von A. Meyer(5) 

 ausgebildete Methodik entsprechen, welche jederzeit eine genaue Feststellung 

 der gebotenen Sauerstoffspannüng gestattet. Als empfindliches Reagens 

 auf Spuren von Sauerstoff kann man die alkalische Brenzcatechin-FeSOa- 

 Lösung nach Binder und Weinland empfehlen (6), sowie die Reaktion 

 von Christomanos (7) mit Phosphortribromid und 10% Cu(N03)2, welches 

 mit Äther überschichtet in Gegenwart von Sauerstoff eine Grünfärbung 

 des Äthers erzeugt, während die darunter befindliche Schichte rot ist. Einen 

 sehr guten Apparat zum Aufbewahren von anaeroben Reagensglaskulturen 

 gab Omeliansky (8) an. Auch Burris(9) methodische Winke sind beachtens- 

 wert. KüRSTEiNER (10) fand die von Wright und Burri benutzte Methodik 

 bei kritischen Vergleichen als die beste. Nach Smith (11) lassen sich Gärungs- 

 röhrchen sehr gut bei der Anaerobenzucht anwenden. Zum Entfernen des 

 Sauerstoffes wird meist die Wasserstrahlluftpumpe und Kali-PjTogallol- 

 mischung benutzt. Bedeutend schneller beseitigt man die letzten Sauerstoff- 

 spuren durch obligataerobe Bacterien. Dauerndes Fernhalten von Sauerstoff 

 läßt sich aber mit Sicherheit nur durch Zuschmelzen der Glasapparate und 

 Vermeidung von Kautschukverbindungen erreichen. Über Anlegen von 

 anaeroben Platten sind die Angaben von Heim (12) zu vergleichen. Prak- 

 tisch ist nach meinen Erfahrungen die von Epstein eingeführte Montierung 



1) F. Bachmann, Zcntr. Bakt.«, II, 36, 1 (1912). — 2) M. Jungano u. 

 A. DiSTASO, Les Anaörobies, Paris 1910. Omeliansky, Lafars Ilandb. techn. Mykol., 

 /, 576. — 3) K1TASAT0 u. Weyl, Ztscli. Hyg., 8, 41; 9, 17. Hesse, Ebenda, 15. — 

 4) Omelianskt, 1. c. FüliRMANN, Abderhaldens llandb. biochem. Arb.melh., 5, I, 

 584 (1911). — 5) A. Meyer, Zentr. Bakt, II, 15, 337 (1905). — 6) Binder w. 

 Weinland, Ber. ehem. Ges. 46, 255 (1913). — 7) A. C. Christomanos, Verh. 

 Naturf.-Ges. (1905), II, /, 76. — 8) Omeliansky, Zentr. Bakt. II, 8, 711 (1902). — 

 9) Bdrri, Ebenda, 533. — 10) J. KtJRSTEiNER, Ebenda, 19, 1, 202 (1907). — 

 11) Th. Smith, Brown u. Walker. Journ. med. Research, 14, 193 (1905). Vgl. 

 auch F. Marino, Ann. Pasteur, 21, 1005 (1907). Biffi, Zentr. Bakt., I, 44, 280 (1907). 

 RuziÖKA, Arch. Hyg., 58, 327 (1906). Lignieres, Compt. rend. Soc. Bio]., Sa, 1091 

 (1919). — 12) L. Heim, Zentr. Bakt., I, 55, 337 (1910). Ferner Oqata, Ebenda, 73, 75 

 (1914). Stickstoff als Kulturmedium: A. Jaiser, Ebenda, 78, 309 (1916). Oidium lactis 

 zur Beseitigung von Sauerstoff spuren: Beijebincz, Akad. Amsterdam, 27, 1089 (1919). 



