§ 2. Reduktion von anorganischen Sauerstoff Verbindungen. 169 



am meisten. Auch bildet die Hefe nach Will und Wanperscheck (1) 

 besonders viel SHj, wenn ihr leicht assimilierbare N- Verbindungen, wie 

 Asparagin, zur Verfügung stehen. 



Hefe vermag sodann jodsaure Salze unter Bildung von Jodiden, 

 ferner KMnO^ zu Manganoxydulsalz [Dahlen (2)] zu reduzieren, Sie 

 wirkt jedoch nicht aut Nitrate, Nitrite, Indigkarmin und Lackmus. 

 Laurent (3) gab allerdings schwache Befähigung der Hefe zur Nitrat- 

 reduktion an. 



An Stelle des gebräuchlichen Nachweises des gebildeten SHg mittels 

 Bleiacetat ist die sehr empfindliche Methylenblauprobe von E. Fischer (4) 

 empfehlenswert. Man versetzt die zu untersuchende Probe mit -^^ Vol. 

 rauchender HCl, setzt einige Körnchen schwefelsaures p-Aminodimethyl- 

 anilin zu und, sobald das letztere gelöst ist, noch 1 —2 Tropfen verdünntes 

 FeClg; bei Gegenwart von H2S entsteht Methylenblau. Das p-Aminodime- 

 thylanilin stellt man dar aus käuflichem Helianthin oder Orange III. Der 

 fein zerriebene Farbstoff wird mit 5 Teilen Wasser und 2—4 Teilen Schwefel- 

 ammonium Übergossen und 10—15 Minuten auf dem Wasserbade erwärmt. 

 Nach dieser Zeit sind 10 g Farbstoff sicher reduziert. Man extrahiert nun 

 mit Äther, entfernt daraus das Sulfid durch Schütteln mit Bleiweiß und 

 Wasser, versetzt die Ätherlösung vorsichtig mit ätherischer Lösung von 

 Schwefelsäure, wobei Überschuß zu vermeiden ist. Hierauf scheidet sich 

 das neutrale Sulfat des p-Aminodimethylanilins aus, welches man aus 

 absolutem Alkohol umkrystallisiert. 



Über die Bestimmungsmethoden hinsichtlich des SHg-Gehaltes der 

 natürlichen Gewässer sind die Untersuchungen von Winkler (5) zu ver- 

 gleichen. 



Sehr instruktiv ist die Erscheinung der Reduktion von selenigsauren 

 und tellurigsauren Salzen durch Bacterien unter Abscheidung von kolloi- 

 dalem Selen und Tellur, wie sie besonders Klett (6) und Scheurlen (7) 

 kennen gelehrt haben. Mäßige Mengen von Natriumtellurit und Natrium- 

 selenit werden meist anstandslos vertragen. Bei obligat anaeroben Formen 

 wirkte aber Selenit, noch mehr Tellurit, entschieden entwicklungshemmend, 

 niemals fördernd. Die Reduktion erfolgt intracellulär. Nach Beijerinck (8) 

 ist die Darreichung des noch unschädlicheren Kaliumtellurates ebenso wirk- 

 sam. Nach Kletts Erfahrungen bewirken sehr zahlreiche Bacterien solche 

 Reduktionen, jedoch in verschiedener Intensität. Gosio (9) fand den Stal- 

 phylococcus pyogenes aureus besonders wirksam. Tote Bacillen zeigen die 

 Reduktionswirkungen nicht. Auch Tuberkelbacillen reduzieren Tellurit (10). 

 Reduktion von Natriumselenit ist ferner von Pilzen (Hefe) bekannt (11). 

 Ammoniummolybdat wird nach Neppi (12) von Bacterien ebenfalls weit- 

 verbreitet reduziert, jedoch viel weniger als Tellurate. Durch alle diese 



1) H. Will u. Wakderscheck, Zentr. Bakt., II, 16, 303 (1906); Ztscb. ges. 

 Brauwes., 29, 73 (1906). Fr. W. Tanner, Journ. Amer. Chem. Soc, 40, 663 (1918), 

 — 2) Dahlen, Justs Jahresber. (1875), p. 286. — 3) E. Laurent, Ann. Inst. 

 Pasteur, 4, 722 (1890). — 4) E. Fischer, Ber. chem. Ges., 16, 2234 (1883). — 



5) L. W. Winkler, Ztsch. analyt, Chem., 40,^ 772 (1902). G. Incze, Ebenda, 5Ö, 

 308 (1917). Redfield u. Huckle, Journ. Amer. Chem. Soc, 37, 607 (1915). — 



6) A. Klett, Ztsch. Hyg., 33, 137 (1900). — 7) Scheurlen, Ebenda, p. 135. — 

 8) Beijerinck, Arch. N^erland. (2), p, 131 (1904). — 9) B. Gosio, Ztsch. Hyg., 5/, 

 65 (1905). R. Gloger, Zentr. Bakt, I, 40, 584 (1906). — 10) S. Belfanti, R. Istit. 

 Lombard. Sei., 9. Mai 1912. Weitere Lit.: Davis, Zentr. Bakt., I, 73, 180 (1914). 

 J. Kligler u. V. E. Levine, Biochem. Bull., 4, 196, 215 u. 217 (1915). — 

 11) A. Harden u. N0RRI8, Biochem. Journ., *, 100 (1914). — 12) B. Neppl Rend. 

 Soc. Chim. Ital. (1909), I, 113. 



