184 Sechzigstes Kapitel: Die Senföle. 



gehen die Senföle beim Erhitzen mit HCl oder mit Wasser unter Druck 

 unter Abgabe von SHg und COj in die entsprechenden Alkylamine über. 

 So gibt Allylsenföl: 



CS : N . C3H5 + 2 H2O = SH2 + CO2 + C3H5 . NH2 ( Allylamin). 



Diese Beziehung wird offenbar biochemisch für die Entstehungs- 

 geschichte der Senföle nicht bedeutungslos sein. 



Die Pflanzen, welche Senfölglucoside führen, enthalten auch Enzyme, 

 welche jene spalten, und die man als My rosin zusammenfaßt. Ob es 

 sich stets um dasselbe Enzym handelt, ist ungewiß. Doch fand Smith (1 ), 

 daß die Enzyme aus verschiedenen Cruciferen auf die Glucoside beliebiger 

 anderer Spezies wirksam waren, und auch sonst ein ähnliches Verhalten 

 zeigten. Dann zeigte Gonnermann(2), daß Myrosin auf keine anderen 

 Glucoside einwirkt als auf Senfölglucoside. 



Nach Guignard(3) ist der Sitz der Senfölglucoside in den parenchy- 

 matischen Geweben zu suchen, in denen sie diffus verteilt sind. Besonders 

 reichlich kommen sie in der Rinde vor. Im Samen enthält der Embryo 

 das Glucosid. Das Myrosin findet sich vollkommen abgetrennt in besonderen 

 Zellen, welche zuerst Guignard(4) in ihrem Charakter als Myrosinzellen 

 richtig erkannte, nachdem sie Heinricher (5) wegen der an ihnen stark 

 erzielbaren MiLLONschen Reaktion als „Eiweißschläuche" beschrieben hatte. 

 Diese Myrosinzellen sind durch alle Gewebe myrosinführender Pflanzen 

 verteilt und finden sich nach Guignard sogar in den Samenschalen. 

 Zur leichteren Erkennung der myrosinführenden Zellen wurde außer der 

 MiLLONschen Reaktion und der gelben Jodfärbung die Violettfärbung des 

 Inhaltes durch Orcin-HCl benutzt. Spatzier (6) färbte die Zellen durch 

 Orcein-HCl. Dieser Autor fand auch, daß in den Myrosinzellen der Cruci- 

 ferensamen bei der Untersuchung in Öl farblose Körnchen hervortreten, die 

 er als „Myrosinkörner" berschieb. Peche (7) empfiehlt zum Myrosin- 

 nachweise eine mit Barytchlorid gesättigte Lösung von Kaliummyronat anzu- 

 wenden, wodurch man in den meisten Myrosinzellen einen Niederschlag 

 von Baryumsulfat erzielt. In Blättern zeichnen sich nach Schweidler 

 die Myrosinzellen durch kleinere Chloroplasten aus. 



Ähnlich wie bei den Cruciferen scheint nach Guignard (8) das 

 Myrosin auch bei den Capparidaceen, Resedaceen, Tropaeolaceen und Lim- 

 nanthaceen lokalisiert zu sein. Ein mit Myrosin übereinstimmendes Enzym 

 ist nach Guignard (9) ferner in Carica Papaya vorhanden, und es ließ 

 sich wahrscheinlich machen, daß auch diese Pflanze ein Glucosinapid 

 enthält. Dies haben die Angaben Hoopers(IO) über die chemischen Be- 

 standteile der Samen von Carica Papaya bestätigt. Weiter hat Guignard 

 in Moringa Myrosin nachgewiesen, wo nach Jadin (11) ebenfalls Enzym- 

 schläuche in den Geweben der verschiedenen Organe zerstreut vorkommen. 



1) W. Smith, Ztsch. physiol. Chem., 12, 427(1888). — 2) M. Gonnermann, 

 Pflüg. Arch., 137, 453 (1910). — 3) L. Guignard, Compt. rcnd., iii, 249, 920 

 (1890); Journ. de Bot., 4, 385 (1890). - 4) Guignard, 1. c. Vgl. auch die An- 

 gaben in SoLERKDER, Systemat. Anatomie der Dicotyledonen (1899), p. 69. — 

 5) E. Heinricher, Ber. bot.. Ges., 2, 463 (1884). Mitteil. Bot. Inst. Graz (1888), 

 p. 1. J. H. Schweidler, Ber. bot. Ges., 27, 274 (1905). Beihefte Bot. Zehtr., 27, 

 I, 422 (1911). Bot. Zentr., ref. 141, 161. — 6) W. Spatzier, Jahrb. wiss. Bot., 

 25, 39 (1893). — 7) K. Pec«e, Ber. bot. Ges., 31, 468 (1913). — 8) Guignard, 

 Cotapt. rend., iiy, 587, 751(1893); Journ. de Bot. (1893), Nr. 19. — 8) Guignard, 

 Ebenda (1894), p. 67, 85. — 10) D. Hooper, Pharm. Journ. (4), 37, 369 (1913). 

 — 11) F. Jadin, Compt. rend. (1900). 



