210 Zweiundsechzigstes Eapitel: Blaus&ureliefernde Glucoside usw. 



geäußerte Ansicht, wonach der Sitz von Glucosides im Parenchymgewebe, 

 der Sitz des Emulsins hingegen in den Stranggeweben liege, auch für die 

 Blätter von Prunus Laurocerasus gültig. Die Emulsinzellen liegen in der 

 Endodermis und im Pericykel der Leitbündel. Wurden die Endodermis- 

 zellen von Laurocerasus frei präpariert und mit Amygdalinlösung erwärmt, 

 so trat rasch Blausäuregeruch auf. Auf diese Weise konnte Guignard 

 auch zeigen, daß der Holzteil der Leitbündel emulsinfrei ist. Zu analogen 

 Ergebnissen kam später Lutz(1). Nach Lehmann (2) soll die Stamm- 

 rinde von Prunus Padus nur Laurocerasin enthalten. Ausgewachsene 

 Blätter sowie die Wurzelrinde enthalten nicht so viel Laurocerasin. Sehr 

 reich an Laurocerasin waren Blüten und Blattknospen. Cambium und 

 Jungholz waren ebenfalls laurocerasinhaltig, nicht aber das alte Holz. 

 Bei Prunus avium, Cerasus, domestica, spinosa und Pirus communis war 

 in Blattknospen, Rinde und Blättern weder Laurocerasin oder Amygdalin 

 nachzuweisen, ebensowenig beim wilden und kultivierten Apfelbaum. 

 Nach Power und Weimar (3) ist Laurocerasin auch in der Rinde von 

 Prunus serotina Ehrh, zugegen. Im reifen Samen der Pomaceen fand 

 Lehmann fast stets nur Amygdalin, während in unreifen Samen auch 

 Laurocerasin zugegen war. 



Noch einige Bemerkungen über den Nachweis der charakteristischen 

 Spaltungsprodukte des Amygdalins. Für Benzaldehyd empfahl Herissey(4) 

 die Darstellung des Hydrazons mit Phenylhydrazin und Essigsäure. Zur 

 quantitativen Benzaldehydbestimmung in bitteren Mandeln wendet Dodge (5) 

 die CANNizzAROsche Umlagerung in alkaUscher Lösung und die darauf- 

 folgende Benzoesäurebestimmung an. 



Bezüglich des Blausäurenachweises sei zunächst die vielbenutzte 

 Pikro-Soda-Papierprobe von Guignard (6) genannt, bei der man als Re- 

 agens eine Lösung von 1 g Pikrinsäure, 10 g Soda auf 100 Wasser verwendet; 

 das damit getränkte Papier färbt sich durch CNH-Dämpfe rot (Hlasi- 

 WETZs ,, Isopurpursäurereaktion"). Es ist angezeigt, vorher nach dem Vor- 

 gange von Mirande (7) die Pflanzen durch Chloroform, CSj, Äther oder 

 Quecksilberdampf abzutöten, um das Amygdalin mögUchst vollständig 

 enzymatisch spalten zu lassen. Will man Cyanhydringlucosidgehalt und 

 freie Blausäure gesondert nachweisen, so ist es. nach Ravenna (8) 

 nötig, das Material zunächst behufs Abtötung des Enzyms in kochende 

 verdünnte Lauge zu tauchen und dann erst die Blausäureprobe zu machen. 

 So ergibt sich die Verteilung und das Vorhandensein der freien CNH, während 

 man mit der direkten Probe die Verteilung der Glucoside erfährt. Mehr- 

 fach ist die Pikrinsodamethode auch zur colorimetrischen quantitativen 

 Blausäurebestiramung herangezogen worden (9). Zum Nachweise von 

 Cyanidspuren soll jedoch nach Lander und Walden (1 0) die Berlinerblau- 



1) L. Lutz, Bull. Soc. Bot., 44, 26 u. 263 (1897). — 2) E. Lehmann, 

 Pharm.-Ztg. f. Rußland (1885), p. 352. — 3) F. B. Poweb u. H. Weimar, Chem. 

 Zentr. (1888), I, 525^ Ber. chem. Ges., 21, 300 (1888). — 4) H. Herissey, Journ. 

 Pharm, et Chim., 23, 60 (1906); Soc. Biol., 60, 67 (1906). — 5) Fr. D. Dodge, 

 Orig.-Com. 8»^ Int. Congr. Appl. Chem., 17, 16 (1912). — 6) L. Guignard, Compt. 

 rend., 142, 645 (1906); Bull. Sei. Pharm., 14, 689 (1908). J. Offner, Bull. Soc. 

 Mycol., 37, 342 (1912). — 7) M. Mirande, Compt. rend., 149^ 140 (1909). — 

 8) C. Ravenna u. M. Tonegutti, Atti Acc. Line. Roma (5), 19, II, 19 (1910). 

 Ravenna u. V. Babini, Ebenda, 21, 640 (1912). Ravenna u. G. Bosinelli, Ebenda, 

 p. 365 (1912). Vgl. auch Rosenthaler, Schweiz. Apoth.-Ztg., 57, 671 (1919). - 

 — 9) Vgl. A. Ch. Chapman, The Analyst, 35, 469 (1910). A. D. Waller, Chem, 

 News, 102, 29 (1910); Proc. Roy. Soc, 82, 676 (1910). — 10) G. Lander u. A. E. 

 Walden, The Analyst, 36, 266 (1911). Ferner L. Chblle, Compt. rend, 169, 973 (1919). 



