292 Dreiundsechzigstes Kapitel: Pyridin- und Chinolinbasen im Pflanzenreiche. 



erklärt die Rotfärbung mit Ammoniummetavanadinat und H2SO4 für 

 die- beste mikrochemische Solaninprobe. Bauer (1) wies kleine Mengen 

 Solanin mit Tellursäure- H2SO4 nach: himbeerrote Färbung beim Erwärmen. 

 Die von Greshoff angeführten Alkaloide von Juanolla aurantiaca, Cestrum 

 foetidissimum, Franciscea u. a. sind noch näher festzustellen. Zu erwähnen 

 bleibt uns noch das für Capsicum charakteristische Alkaloid Capsaicin. 

 Seit Braconnot (2) waren viele Bemühungen dahin gerichtet, das scharfe 

 Prinzip der Capsicumfrüchte kennen zu lernen, doch sind erst in neuerer 

 Zeit nennenswerte Ergebnisse erzielt worden. A. Meyer (3) wies nach, 

 daß der scharfschmeckende Stoff ausschließlich in den Placenten der Frucht 

 lokalisiert sei. IstvAnffy (4) behauptet allerdings, daß es mikrochemisch 

 auch in der Pericarpepidermis und im Samen nachzuweisen sei. Nestler (5) 

 konstatierte, daß in der Scheidewand älterer Früchte Capsaicinkrystalle ab- 

 gelagert sind. Die Benennung Capsaicin rührt von Thresh (6) her, welcher 

 den Stoff aus dem Benzolextrakt krystallinisch gewann und ihm die Formel 

 C6H14O2 zuteilte. Pabst (7) erklärte wieder das scharfe Prinzip von Capsicum 

 für eine amorphe Harzsäure, andererseits beschrieb Mörbitz (8) als Capsa- 

 cutin ein krystallinisches stickstoffhaltiges Präparat der Zusammensetzung 

 C35H54N3O4. Micro (9) gab als Formel des Capsaicins CigHgsNOa. Nach 

 Nelson (1 0) hat das Capsaicin die Konstitution eines Kondensationsproduktes 



0CH3- — 

 von Vanillylamin und einer Decylensäure HO • <^ \ • CHg • NH • CO • 



C9H17, weil die Säurehydrolyse des Capsaicins 3-Oxy-4-methoxylbenzyl- 

 amin: Vanillylamin CgHuNOg, die alkahsche Hydrolyse Decylensäure 

 CjoH igOa liefert. Dementsprechend wäre Capsaicin von der Zusammensetzung 

 CggHäjNOa. Über die quantitative Bestimmung von Capsaicin hat MicKO 

 Angaben gemacht (11). AusCapsicum annuum isolierte de LA Puerta (12) 

 ein scharfes Prinzip Capsinsäure, amorph, in der Menge von 2—3%. Von 

 den übrigen Tubifloren ist bezüglich einer Acanthacee des indischen Monsun- 

 gebietes, der Justicia Adhatoda L. oder Adhatoda vasica Nees, das Vor- 

 kommen eines Alkaloides Vasicin durch Hooper(13) angezeigt worden. 

 Boorsma(14) erwähnt Alkaloidgehalt bei einer Reihe von javanischen 

 Acanthaceen: Strobilanthesblättern, Phlogacanthus cardinaUs, Asystasia 

 gangetica, Graptophyllum pictum, Justicia Gendarussa L., ferner von 

 Bignoniaceen: Oroxylum indicum Vent., Tecoma stans Juss., Spathodea 

 stipulata, denen sich die Angabe von Peckolt (15) hinsichtlich eines mög- 

 lichen Alkaloidgehaltes von Blättern und Wurzelrinde der Bignoniacee 

 Jacaranda procera anreiht. Auch die Scrophulariacee Scoparia dulcis führt 

 Alkaloid. 



1) Bauer, Ztsch. angew. Chem. (1899), p. 99. — 2) Braconnot, Ann. Chim. 

 et Phys. (2), 6, 122 (1817). Buchheim, Arch. Pathol., 24 (1872). Fleischer, Arch. 

 exp. Pathol., 9, 117. — 3) A. Meyer, Pharm.-Ztg., 34, 130 (1889). — 4) G. Ist- 

 VANFFY, Just (1891), I, 65. — 5) A. Nestler, Ztsch. Unt. Nahi-. Gen.mittel, jj, 

 661 (1906). — 6) J. H. Thresh, Pharm'. Journ. (1876), j, 941; 7, 21, 259, 473 

 (1877). — 7) Th. Pabst, Arch. Pharm., 230, 108. — 8) J. Mörbitz, Chera. Zentr, 

 (1897), II, 593. — 9) K. Micko, Ztsch. Unters. Nähr. Gen.mittel (1898), p. 818; 

 (1899), p. 411. — 10) E. K. Nelson, Journ. Amer. Chem. Soc, 41, 1115 (1919); 

 ebenda, p. 1472; 42, 597 (1920). Abänderung der Konstitutionsformel: Lapworth 

 u. RoYLB, Journ. Chem. Soc, 115, 1109 (1919). — 11) Vgl. auch E. K. Nelson, 

 Journ. Ind. Eng. Chem., 2, 419 (1910). — 12) G. de la Puerta, Biochem. Zentr., 4, 

 Ref. 1143—4 (1905). — 13) D. Hooper, Pharm. Journ. (3), 18, 841 (1888). — 

 14) B00RSMA, Med. s'Lands Plantentuin (1900). — 15) Th. Peckolt, Mercks 

 Jahresber. (1908), p. 241. 



