300 Dreiundsechzigstes Kapitel: Pyridin- und Chinolinbasen im Pflanzenreiche. 



ist. Die von Sonnenschein (1) einst ausgesprochene Meinung, daß Brucin 

 bei der Behandlung mit Salpetersäure Strychnin gäbe, ist durch uMeine 

 strychninhaltige Brucinpräparate verschuldet worden, und längst wieder- 

 legt. Leuchs (2) stellte im Verlaufe des oxydativen Abbaues von Brucin 

 eine neue Base CigHaoNgOs, das Curbin, dar. 



Brucin und Strychnin geben eine Reihe bekannter schöner Farben- 

 reaktionen, die zur Auffindung kleiner Mengen dieser Alkaloide verwendet 

 werden können. Eine der empfindlichsten Strychninproben ist die, aller- 

 dings mit anderen Alkaloiden und sonstigen organischen Stoffen ebenfalls 

 zu erhaltende Violettfärbung mit dem WENTZELschen Reagens: 1 Teil 

 KMnOi, 200 H 2804(3). Vanadinschwefelsäure gibt eine rote Strychnin- 

 reaktion, nach Mandelin (4) ; Phenolcyankali und Ferricyankali erzeugt 

 Violettfärbung: Davy(5); Gersulfat und Schwefelsäure gibt Blaufärbung (6). 

 Mit HNO 3 und etwas Kaliumchlorat entsteht bei Strychningegenwart 

 beim Erwärmen eine Rotfärbung: Bloxam (7). Die Reaktion von Mala- 

 QUIN (8) beruht nach Deniges (9) auf der Bildung von Tetrahydrostrychnin 

 bei der Behandlung der Probe mit Zink und Mineralsäure. Man wendet 

 am besten ein vorher mit HNO3 gewachsenes Zink an, fügt HCl hinzu und 

 erwärmt; sodann schichtet man konzentrierte Schwefelsäure unter die 

 Probe: es erscheint nun ein rotgefärbter Ring. Strychnin ist mit Kalium- 

 ferrocyanid in saurer Lösung bei geringem Überschuß fällbar, während Chinin 

 erst bei großem Überschuß ausfällt (1 0). 



Brucin gibt die bekannte Rotfärbung mit konzentrierter Salpeter- 

 säure oder salpetriger Säure, ebenso aucii mit anderen oxydierenden Stoffen, 

 wie Mercuronitrat(ll), Chromsäuregemisch (12). Nach Leuchs (13) erfolgt 

 bei dieser Reaktion eine Chinongruppierung aus den beiden Methoxylgruppen. 

 Rotfärbung erfolgt ferner mit Zinnchlorür (14), Selensäure und Salpeter- 

 säure (15). 



Die Physiologie der Strychnosbasen ist noch wenig erforscht. Lindt 

 bemühte sich zuerst die Lokalisation der Alkaloide im Nux Vomica- Samen 

 ausfindig zu machen, doch war seine Ansicht, daß die Zellmembranen 

 alkaloidhaltig seien, unzutreffend, indem die Untersuchungen von Gerock 

 und Skippari (16), sowie von Tunmann (17) ergeben haben, daß der Endo- 

 spermzellinhalt Sitz der Alkaloide ist, und die letzteren in dem Fett gelöst 

 vorkommen. Auch die Samenschale ist alkaloidhaltig, und so geht durch 

 Verlust derselben bei der Keimung etwa Vs der Gesamtalkaloide verloren. 



24 (1899). Bromcyaneinwirkung u. Isomerisierung: G. Mossler, Ztsch. allg. österr. 

 Apoth.Ver., ^7, 417 (1909). 



1) Sonnenschein, Ber. ehem. Ges., 8, 212 (1875). Widerlegung: Cownley, 

 Pharm. Journ. (1876), p. 841. Shenstone, Ebenda (1877), p. 652; (1878), p. 154. 

 — 2) H. Leuchs u. Geo Peirce, Ber. ehem. Ges., 45, 2653 (1912). — 3) Guerin, 

 Journ. Pharm, et Chim. (6), 17, 553 (1903). — 4) Mandelin, Areh. Pharm., 221, 

 606 (1883). — 5) N. Davy, Just (1884), I, 122. — 6) Sonnenschein, Ber. ehem. 

 Ges., j, 631 (1870). — 7) Bloxam, Chem. News, 55, 155 (1887). C. Reichard, 

 Chem.-Ztg., 28, 977 (1904). — 8) Malaquin, Journ. Pharm, et Chim. (6), 30, 546 

 (1909). — 9) G. ÜENiGfes, Bull. Soe. Chim. (4), 9, 537, 542, 544 (1911). Beckurts, 

 Jahiesber. (1903), p. 217. Tetrahydrostrychnin: H. Leuchs, Ber. ehem. Ges., 47, 

 536 (1914). — 10) Ch. Simmonds, The Analyst. 39, 81 (1914). — 11) Flückiger, 

 Arch. Pharm., 203, 403 (1875). — 12) Draggendorff, Ebenda, 212, 209 (1878). — 

 13) H. Leuchs u. R. Anderson, Ber. chem. Ges., 44, 2136 (1911). D. B. Dott, 

 Pharm. Journ., 89, 144, 171 (1912). — 14) Dryer, Chem. News, 48, 157(1884).— 

 15) Lindt, Ztsch. wiss. Mikrosk., i, 237 (1884). — 16) J. E. Gerock u. F. J. 

 Skippari, Arch. Pharm., 230, 555 (1892). — 17) 0. Tunmann, Arch. Pharm. (1910), 

 p. 644. 



