Vierundsechzigstes Kapitel: Indolderivate im pflanzlichen Stoffwechsel. 357 



Kulturflüssigkeit durch die rote Farbenreaktion zu erkennen. Diese Re- 

 aktion wurde zuerst bei Vibrio cholerae asiaticae durch Poehl, Bujwid, 

 DuNHAM, Ali-Cohen (1) aufgefunden, und sodann durch Petri (2) studiert. 

 Nach Raybaud (3) wurde von 60 untersuchten Bacterienarten 39 mal die 

 Indolnitritreaktion erhalten. Salkowski (4) zeigte, daß diese als „Cholera- 

 rotreaktion" bezeichnete Eigentümlichkeit nichts anderes ist, als die schon 

 1875 durch Nencki (5) beschriebene Nitroso-Indolreaktion, und daß sie 

 auf der gleichzeitigen Gegenwart von Nitrit und Indol in den Kulturen be- 

 ruht. Den Farbstoff, welcher bei der Cholerarotreaktion entsteht, hat 

 Brieger (6) genauer untersucht; dieses violette Pigment liefert bei der 

 Reduktion mit Zinkstaub Indol. Indol ohne Nitrit wird außerdem noch bei 

 sehr zahlreichen Bacterien gebildet; in der Zusammenstellung bei Flügge (7) 

 werden genannt der Bacillus der Kaninchenseptikämie, Bac. Marsiliensis 

 Rietsch-Jobert, Bac. mustelae septicus, Bac. coli communis und ictero- 

 genes. Nach Morris (8) sind starke Indolbildner Bac. murisepticus, Bact. 

 coli anindolicum, schwächere Pyocyaneus, typhi und andere, nach Jones (9) 

 auch Bacill. carotovorus. Manchmal erscheint Indol erst nach längerer 

 Züchtung (1 0). Als Kulturflüssigkeit wird von Selter(11) empfohlen 

 10% Pepton mit 0,5 Natriumphosphat und 0,1 MgS04. Zipfel (12) empfahl 

 mit Recht einen Zusatz von Tryptophan. Bei Choleravibrionen erscheint 

 in Peptonwasser die größte Indolmenge nach 42 Stunden; das erste Auftreten 

 ist aber schon nach 6 Stunden zu beobachten (Mazzetti) (13), früher als die 

 größte Ansammlung von Nitrit erreicht ist. Die Indolbildung geht voraus- 

 sichtlich über Indolessigsäure und Indolcarbonsäure, und sicher wird oft 

 die Tryptophanspaltung nicht bis zum Indol weitergeführt (14). Anderer- 

 seits ist für manche Bacterien, wie typhi, paratyphi und diphtheriae nach- 

 gewiesen (15), daß sie freies Indol verbrauchen, und die Indolprobe deshalb 

 negativ ausfällt. Vorhandenes Tryptophan und Indol dürfte deshalb oft 

 nur als Überschuß der Erzeugung über den Verbrauch zu deuten sein. 

 Nach den übereinstimmenden Angaben der Untersucher (16) unterbleibt 

 die Indolbildung aus Pepton, sobald die Nährflüssigkeit genügend Zucker 

 enthält. 



Zum Indolnachweise genügt es nach Morris in vielen Fällen, der Probe 

 außer Schwefelsäure noch etwas Kaliumnitrit hinzuzufügen. Doch ist die 

 empfindlichste Probe jene mit dem EHRLiCHschen Reagens: Dimethylamino- 



1) 0. Bujwid, Ztsch. Hyg., 2, 52 (1887). E. K. Dunham, Ebenda, p. 337. 

 Ch. Ali-Cohen, Chem. Zentr. (1887), p. 1259. W. B. Wherry, Ebenda (1906), I, 

 1037. — 2) R. J. Petri, Ebenda (1890), I, 809. — 3) A. Raybaud, Soc. Biol., 

 69, 479 (1910). — 4) E. Salkowski, Virch. Arch., 100, 366; Chem. Zentr. (1888), 

 I, 123. — 5) Nencki, Ber. ehem. Ges., 8, 727 (1875). — 6) Brieger, Dtsch. med. 

 Woch.schr. (1887), p. 303, 469. Zu dieser Reaktion auch L. Spiegel, Chem.-Ztg., 

 17, 1563 (1893). Beijerinck, Zentr. Bakt., 12, 715 (1892). Nicolle, Blanc u. 

 Caillon, Compt. rend. Soc. Biol., 82, 1126 (1919). — Quant tative Bestimmung: 

 Zoller, Journ. Biol. Chem,, 41, 25 (1920). — 7) Flijgge, Die Miliroorganisraen, 

 3. Aufl., Bd. II, p. 365, 373, 405, 406 (1896). — 8) M. Morris, Arch. Hyg., 

 50, 304 (1897). Coli: H. Seidelin u. Fr. Lewis, Journ. Hyg., 11, 503 (1912). 

 Proteus anindologenes: van Loghem, Ann. Inst. Pasteur, 32, 295 (1918). Groot, 

 Ebenda, p. 299. Influenzabacillus: Rhein, Compt. rend. Soc. Biol., 82, 138 (1919). 

 — 9) L. R. Jones, Zentr. Bakt., II, 7, 65 (1901). — 10) K. Poppe, Ztsch. 

 Infekt.krankh. d. Haustiere, 5, H. 1/2 (1908). — 11) Selter, Zentr. Bakt., I, 51, 

 465 (1909). — 12) H. Zipfel, Ebenda, 64, 55 (1912). E. A. Baudet, Fol. Micro- 

 biol.,-2, H. 3 (1914). — 13) L. Mazzetti, Zentr. Bakt., I, 68, 129 (1913). — 

 14) Vgl. Ch. Porcher u. L. Panisset, Compt. rend., 148, 1336 (1909). A. Berthelot, 

 Ebenda, 156, 641 (1913). — 15) Vgl. Herzield u. Klinger, Zentr. Bakt, I, 76, 

 1 (1916). — 16) Kruse, Ztsch. Hyg., 17, 48. Gorini, Zentr. Bakt., 13. Tn. Smith, 

 Journ. Exper. Med. (1897). D. Rougenzoff, Soc. Biol., 75, 1098 (1913). A. Homer, 

 Journ. of Hyg., 15, 401 (1916). Wyeth, Biochem. Journ., 13, 10 (1919). 



