484 Siebenundflechz. Kap. : Omnicellulär vorkommende cycl. Kohlenstoffverbindungen. 



Phytase ist ein Sekretionsenzym und kann aus dem Extrakt durch Alkohol- 

 fällung oder durch Aussalzen mit Ammoniumsulfat dargestellt werden. 

 Vielleicht sind zwei Enzymwirkungen bei der Spaltung des Phytins zu unter- 

 scheiden; eine, welche unlösliche organische Phosphatkomplexe in Lösung 

 bringt und eine andere, welche die anorganischen Phosphate daraus abspaltet. 



In den Samen ist nach Suzuki und Yoshimura der größte Teil des P 

 als Phytin vorhanden, während in den Vegetationsorganen der anorganisch 

 gebundene Phosphor vorherrscht. Aus Laubblättern von Castanea vesca 

 haben Curtius und Franzen(I) Phytin dargestellt. Nach Hart und 

 ToTTiNGHAM 12) beträgt die Phytinphosphorsäure des Weizenkorns 38 bis 

 48% der Gesamtphosphorsäure. Die äußersten Schichten enthalten am 

 meisten Phytin, sonst ist es gleichmäßig im Korn verteilt. Auch im Reis- 

 embryo liegt der größte Teil der PO4 als Phytin-P04 vor (3). Aus Brassica 

 rutabaga und Medicago sativa erhielten Hart und Tottingham kein Phytin. 

 Außerdem beziehen sich Literaturangaben auf Phytin in Samen von Cicer 

 arietinum (4), Gossypium (5), Vitis (6). Auch die von Anderson (7) aus 

 Weizenkleie und Baumwollsaatmehl angegebenen phytinähnlichen Sub- 

 stanzen dürften mit dem gewöhnlichen Phytin zusammenfallen. 



Gewichtige Gründe sprechen dafür, daß die in den Glöboiden der 

 Aleuronkörner enthaltene Substanz, welche schon von Pfeffer als organisch 

 gepaarte Phosphorsäure an Kalk und Magnesia gebunden angesehen wurde, 

 mit Phytin identisch ist (8). Im Tierkörper dürfte nach Starkenstein' 

 das Phytin die Muttersubstanz des so häufig vorkommenden Inosits sein (9). 



Zur Darstellung der Phytinsäure wird meist die Ausfällung mit Baryt 

 benutzt (10). Frühere Angaben über synthetisches Phytin waren nicht 

 beweisend (11). Andersons Versuche ließen vermuten, daß die native 

 Substanz einlnosit-Hexaphosphorsäureestcr und die wiederholt angetroffenen 

 Penta-, Tri-, Di- und Monophosphate bereits intermediäre Abbauprodukte 

 sind (12). Posternak (13) hat denn auch durch die gelungene Synthese 

 der natürlichen Phytinsäure aus Inosit und Phosphorsäureanhydrid und die 

 Darstellung der Salze bewiesen, daß es sich im Phytin um einen Hexa- 

 phosphorsäure-Inositester handelt. Zur Phytinbestimmung hat Heuser (14) 

 ein Verfahren ausgearbeitet, das auf der Titration mit Eisenchlorid basiert. 



~r)~TH. Curtius u. Franzen, Sitz.ber. Heidelberg. Akad., 1916, 7. — 2) E. B. 

 Hart u. W. E. Tottingham, Journ. Biol. Chem., 6, 431 (1909). — 3) L. Bernar- 

 dini, Acc. Line. Roma (5), 21, I, 283 (1912). — 4) As. Zlatarow u. Stoikow, 

 Ztsch. Unters. Nähr. u. Gen.mittel, 26, 242 (1913); j/, 180 (1916). — 5) R. J. 

 Anderson, Journ. Biol. Cliem., 13, 311 (1912). J. B. Rather, Journ. Amer. Chem. 

 Soc, 35, 890 (1913). Anderson, Journ. Biol. Chem., 17 141, 151, 1C5, 171 (1914). 

 — 6) M. SoAVE, Ann. Acc. Agricolt. Torino, 49, (1906). Trigonella-Saraen: Wünschen- 

 DORFF, Journ. Pharm, et Chim. (7), 10, 152 (1914). — 7) R. J. Anderson, Journ. 

 Biol. Chem., 12, 447 (1912). — 8) E. Starkenstein, Biochem. Ztsch., 30, 56 (1910). 

 A. R. Rose, Biochem. Bull., 2, 21 (1912). — 9) Starkenstein, 1. c. (1910). Für 

 Samen: M. Soave, Staz. Sper. Agrar. ital., 39, 413 (1906); Annali di Bot., 5, 47 

 (1905). — 10) Darstellung: A. Contardi, Acc. Line. Roma (5), 19, I, 23; 18, I, 64 

 (1910). R. H. A. Flimmer u. H. J. Page, Biochem. Journ., 7, 157 (1913). G. Clarke, 

 Journ. Chem. Soc, 105, 635 (1914). — Eigenschaften von Phytin: M.' A. Jegorow, 

 Biochem. Ztsch., 42, 432 (1912). Salze der Phytinsäure: R. J. Anderson, Journ. 

 Biol. Chem., 11, 471; 12, 97 (1912). Quantit. Phytinbestimmung: Rippei, 

 Biochem. Ztsch., 103, 163 (1920). — 11) Konstitution: \Vl. Vorbrodt, Anzeig. 

 Akad. Krakau (1910), A. 414. C. Neuberg, Biochem. Ztsch., 9, 557 (1908); 61, 

 187 (1914). M. A. Jegorow, Ebenda, 61, 41 (1914). — Angaben über Synthese: 

 A. Contardi, 1. c. (1910); Gazz. chim. ital., 42, I, 408(1912). — 12) Hierzu: Ander- 

 son, Journ. biol. Chem., 18, 425, 441 (1914); 20, 463, 475, 483, 493 (1915); ferner 

 Clarke, Journ. Chem. Soc, 107, 360 (1915). Robinson u. Mueller, Biochem. 

 Bull., 4, 100 (1915). Rather, Journ. Amer. Chem. Soc, 39, 2506 (1917); 40, 523 

 (1918). — 13) PosTERNAK, Compt. rend., 168, 1216; 169, 37, 138 337 (1919). — 

 14) Wo. Heubner, Biochem. Ztsch., 64, 409, 422 (1914). 



