774 Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 



413 (1914). Blaualgen: Maertens, Dissert. Halle 1914. Hardee, Ztscu. f. Bot., 9, 

 145 (1917). Glade, Ztsch. Naturwiss., 86, 40 (1915). Zoochlorellen aus Spongilla: 

 LiMBERGER, Sltz.bcr. Wien. Akad., I, i2y, 395 (1918). Spirogyra: Bokorny, Hedwigia, 

 5g, 340 (1918). Gomontia lignicola, eine Holz durchbohrende Alge: Moore, Ann. 

 Missouri Bot. Gard., 5, 211 (1918). Zuckeraufnahme durch Flechtengonidien: Sta- 

 BiNSKA, Publ. Inst. Bot. Genöve (8), 11. H. (1914). Zu Pütters Theorie der Ernährung 

 der Seetiere durch organische wasserlösliche Stoffe: Henze, Pflüg. Arch., 123, 478 

 (1908). Pütter, Ztsch. allg. Physiol., 7, 283 (1907). Definierte Nährlösung für Para- 

 maecium: Peters, Journ. of Physiol., 53, CVIII (1920). — Flechten: Über den Ery- 

 thrit: 0. Hesse, Journ. prakt. Chem., 92, 425 (1915). Parmelia: Keegan, Chem. News, 

 114, 74 (1916). Salkowski, Ztsch. physiol. Chem., 104, 105 (1918). 



p. 395. Moose. Saccharose in Sphagnum und Hypnum: Goris u. Vischniac, 

 Bull. sei. pharm., 20, 390 (1913). Stärkespeicherung und Stärkeumsatz bei Bryophyten: 

 Rancken, Act. soc. faun. et flor. fenn., 3g, Nr. 2, Helsingfors 1914. Andreaea und 

 Frullania erzeugen keine Stärke. Inulin bei Scapania. Nach Mason, Not. Bot. School 

 Trin. Coli. Dublin, II, p. 319 (1916). Sei. Proc. Dublin Soc, 75, 13 (1916), •sind Dextrose, 

 Lävulose und Saccharose bei Moosen verbreitet, Maltose, wo immer Stärke vorkonrmt. 

 Saccharose entsteht bei Belichtung zuerst in den Chloroplasten. — Kultur und künst- 

 liche Ernährung bei Moosen: Servetta?, Ann. sei. nat. (9), 17, 111 (1913). UiuscH, 

 Ber. bot. Ges., 31, 543 (1913). — Farnpflanzen: in Selaginella lepidophylla 2,5% Tre- 

 halose nach Anselmino u. Gilg, Ber. dtsch. pharm. Ges., 23, 326 (1913); bei anderen 

 Arten kein solcher Befund. — Zuckerarten in ruhenden Samen. In Leinsamen fand 

 VAN Kampen, Chem. Weekbl., 11, 142; Landw. Vers.stat., 83, 471 (1914), Glucose, 

 besonders in der Epidermis, weniger in den inneren Teilen der Samen. Zuckerbestim- 

 mung im ruhenden Gerstenkorn: Kluyver, Dissert. Delft 1914: Raffinose und Saccha- 

 rose gefunden. Für Maiskeime Winterstein u. Wünsche, Ztsch. Physiol. Chem., 

 g5, 310 (1915). In den Samen von Corchorus capsularis 2,5% Raffinose nach Annett, 

 Biochem. Journ., 11, 1 (1917). 



p. 399. Stärke. Darstellung aus Roßkastanien: Wischo, Ztsch. allg. österr. 

 Apoth.Ver., 57, 49 (1919). Allgemeines: Pringsheim, Die Polysaccharide, Berlin 1919. 

 — Zählung der Stärkekörner, Bestimmung ihres Einzelgewichtes: Hartwich u. Wich- 

 mann, Arch. Pharm., 250, 452 (1912). Mikroskopische Färbung: Schütz u. Wein, 

 Chem.-Ztg., 39, 143 (1915). Blunck, Ztsch. wiss. Mikr., 31, 476 (1915). Hanausek, 

 Arch. Chem. u. Mikr., 3 (1915). Unna, Ztsch. Unt. Nähr., 36, 49 (1918). Spaltenbildung 

 in konzentrierten Lösungen: Reuss, Ztsch. Unt. Nähr., 32, 269 (1916). Mechanische 

 Beschädigung: Scheffer, Ztsch. ges. Getreidewes., 11, 41 (1919). — Schichtung und 

 Vergleich mit Liesegang- Ringen: Küster, Ber. bot. Ges., 31, 339 (1913). Struktur 

 und diagnostischer Wert: Harvey, Lilly Sei. Bull. Ser. I, Nr. 5, p. 194 (1914). — Eiweiß- 

 gehalt: Moser, Ztsch. Hyg., 83, 113 (1917). Aschengehalt: Verkade, Chem. Weekbl., 

 15, 427 (1918). Verkleisterungstemperatur: Do.x u. Roark, Journ. Amer. Chem. Soc, 

 39, 742 (1917). Francis u. Smith, Journ. Ind. Eng. Chem., 8, 509 (1916). Herter 

 u. Meyer, Ztsch. ges. Getreidewes., 12, 43 (1920). — Pseudokrystalle von Stärke, 

 Entflockung: Malfitano u. Moschkoff, Compt. rend., 156, 1412 u. 1681 (1913). Stärke- 

 gailerten: Meyer, Kolloidchem. Beih., 5, 1 (1913). Samec u. Hoefft, Ebenda, p. 141 

 (1913), legen die Analogie dar für Altern, Lösung und Entaschung, denen allen Ver- 

 armung an Elektrolyt, Phosphat-Ion, zugrundeliegt. Erst gequollene Stärke gibt 

 Elektrolyte reichlich ab. Elektrolytgehalt und Fällung löslicher Stärke: Mattill, 

 Biochem. Bull., 2, 553 (1913). Verschiebungen des Phosphatgehaltes bei den Zustands- 

 änderungen und dem Abbau der Stärke: Samec, Anzeig. Wien. Akad., 12, 261 (1914); 

 Kolloidchem. Beih., 6, 23 (1914). Beim Verquellen mit KOH entsteht ein P-haltiger 

 und ein P-freier Anteil; beim diastatischen Abbau P-haltige Dextrine, die mit Wasser 

 gekocht unter Abgabe von PO4 gespalten werden. Vgl. auch Samec, Ztsch. physik.chem. 

 Biol., j, 173 (1914). Amylopektin wäre ein Amylose-Phosphatkomplex, Amylose das 

 P-freie Kohlenhydrat. — Über die Amylophosphorsäure: Northrop u. N-elson, Journ. 

 Amer. Chem. Soc, 38, 472 (1916). Künstliches Präparat: Kerb, Biochem. Ztsch., joo, 

 3(1919). Über Alkalistärke: Samec. Kolloidchem. Beih., 5, 33 (1916). Die Veränderungen 

 be m Altbackenwerden des Brotes: Katz, Ztsch. physiol. Chem., gs, 104, 136 u. 147 (1915). 

 Verschaffelt, Ebenda, p. 130. — Stärkelösungen: Ericson, Svensk. Pharm. Tidskr. 

 (1916), p. 499. Sallinüer, Kolloid-Ztsch., 25, 79 (1919). Über Altern derselben Sal- 

 linger, Ebenda, p. 111. — Adsorption bei. Stärke: Rakowski, Journ. russ. phys.chem. 

 Ges., 45, 13 (1913). — Jodstärke wird durch Pukallfilter nicht hindurchgelassen: 

 Bariumsulfat reißt Jodstärke nieder, Stärkelösung nur schwer: Vanino u. Schinner, 

 Arch. Pharm., 253, 47 (1915). Blaue Adsorptionsverbindungen von Jod: Barger u. 

 Starling, Journ. Chem. Soc, J07, 411 (1915). Hemmung der Jodstärkebildung: 

 Clementi, Arch. di farm.,-go, 258 (1915). Jodionen zur Blaufärbung nicht nötig: 

 Berczeller, Biochem. Ztsch., 84, 106 (1917). Entfärbung durch Licht: Bordier, 



