Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 785 



183 (1915). Das Kotporphyrin: Fischer, Ztsch. physiol. Chem., 98, p. 14. — Milroy, 

 Biochcm. Journ., 12, 318 (1918). Herzfeld u. Klinge^, Biochem. Ztsch., xoo, 64 

 (1919). Hämocyanin: Dhere, Journ. Physiol. Pathol., 18, 221 (1919). — Küster, 

 Bei. chem. Ges., 53, 623 (1920); Ztsch. physiol. Chem., 109, 125 (1920). 



p. 690. Physiologie des Anthocyans, Anthocyanbildung in der Zelle: Rolle 

 von Vacuolen, Mitochondrien?: Guilliermond, Compt. rend., 156, 1924 (1913). Pensa, 

 Anat. Anzeig., 45, 81 (1913). Guilliermond, Compt. rend., 157, 1000 (1913); Compt. 

 rend. Soc. Biol., 75, 478 (1914). Pensa, Anat. Anzeig., 46, 13 (1914). Löwschin, Ber. 

 bot. Ges., 32, 386 (1914). Guilliermond, Rev. gen. Bot., 25bis, 295 (1914). Mirande, 

 Compt. rend., 163, 368 (1916). Anthocyankörper in Zellen: Gertz, Svensk. Bot. Tidskr., 

 8, 405 (1914). Cyanocysten nach Solederer, Beih. Bot. Zentr., 33, I, 298 (1916). — 

 Für Pilze spricht Bezsonow, Compt. rend., 159, 480 (1915), von einem in Wasser lös- 

 lichen gelben ,,Anthocyanfarbstoff" bei Fusarium orobanchus. Für Lebermoose: 

 Nagai, Bot. Mag. Tokyo, 29, 90 (1915). — Kein Anthocyan als Ursache der vorüber- 

 gehenden Rotfärbung einiger Blätter mit Salpetersäure bei der Xanthoproteinprobe 

 nach Gertz, Biochem. Ztsch., 83, 129 (1917). Farbstoff zellen bei Ricinus: Baum- 

 GÄRTEL, Ber. bot. Ges., 35, 603 (1917). Anthocyan als mikrochemisches Reagens: 

 Gertz, Univ. Lund Arsskr., 1916, 12, 57. Einfluß von Temperatur und Licht auf die 

 Färbung des Anthocyans: Portheim, Denkschr. Wien. Akad., 91, 499 (1915). Anthocyan 

 als Indicator: Chauvierre, Bull. soc. chim. (4), 25, 118 (1919). Shibata, Journ. Amer. 

 Chem. Soc, 41, 208 (1919). — Mikrochemische Anwendung von neutralem Bleiacetat: 

 Combes, Assoc. Av. Sei., 40. Sess., 2, p. 464 (1914). — Bezüglich des grünen Umschlages 

 mit Alkali meint Willstätter, daß es sich um eine Mischfarbe handle von blauem 

 Anthocyaninsalz und dem intensivgelben Alkalisalz der farblosen Anthocyancarbinole. 

 — Übersichten über Anthocyanine: Horovitz, Biochem. Bull. 4, 161 (1916). Keegan, 

 Chem. News, iii, 87 (1915). Willstätter, Pharm. Post, 48, 921 (1915). Schroeder, 

 Ztsch. f. Bot., 9, 546 (1917). de Graaff, Chem. Weekbl., 15, 122 (1918). Wheldale, 

 The Anthocyanin Pigments of Plauts, Cambridge 1916. — Lit. Keeble, Armstrong 

 u. Jones, Proc. Roy. Soc, 86, 308 (1913). Jones, Ebenda, p. 318. Keeble, Ebenda, 

 87, 113 (1913). Wheldale, Ebenda, p. 300; Biochem. Journ., 8, 204 (1914). Everest, 

 Proc Roy. Soc, 87, 444 (1914). Combes, Compt. rend., 157, 1002 u. 1454 (1913); Ber. 

 bot. Ges., 31, 570 (1913); Compt. rend., 158, 272 (1914). Rose, Ebenda, p. 966. Tswett, 

 Biochem. Ztsch., 58, 225 (1913). Pigment der Hypericumblüten: Kozniewski, Kosmos, 

 Lemberg, 38, 1385 (1913). Topographische Verteilung von Anthocyan: Wissemann, 

 Dissert. Göttingen 1911. — Zur Anthocyanchemie : Wichtig ist der Nachweis von Will- 

 stätter, Sitz.ber. Berlin. Akad. (1914), p. 769, daß Quercetin bei 0" in starksaurer 

 Lösung reduziert in Allocyanidinchlorid übergeht, während es bei 35*' Cyanidinchlorid 

 liefert. Lit.: Everest, Proc. Roy. Soc, 88, 326 (1914). Combes, Rev. gen. Bot., 25bis, 

 91 (1914). Bartlett, U. S. Dep. Agr. Bur. Plant Ind. Bull-, 264, 1 (1913). Wheldale, 

 Journ. of Genetics, 4, 103 (1914); Biochem. Journ., 8, 204 (1914). Isolierung als Pikrate: 

 Willstätter, Ber. chem. Ges., 51, 782 (1918). Everest, Journ. of Genetics, 4, 361 

 (1915). Brunner, Ber. nat. med. Ver. Innsbruck, j6, 23 (1917). Kryz, Ztsch. Unt. 

 Nähr., 37, 125 (1919); 38, 364 (1919); Österr. Chem.-Ztg., 23, 65 (1920). Butylalkohol 

 als Lösungsmittel für Anthocyanine: Rosenheim, Biochem. Journ., 14, 73 (1920). — 

 Physiologie: N-Mangel fördert bei Tradescantia stark die Anthocyanbildung: Czart- 

 KOWSKi, Ber. bot. Ges., 32, 407 (1914). Anthocyanreichtum alpiner Pflanzen: Gertz, 

 Bot. Notis. (1914), p. 101. Ferner: Korinek, Bot. Zentr., 129, 375. UV-Absorption: 

 Michaud u. Tristan, Arch. sei. phys. et nat., 37, 50 (1914). — Rose, Compt. rend., 

 158, 956: Rev. gen. Bot., 26, 267 (1914). Shibata, Bot. Mag. Tokyo, 29, 118 u. 301 (1916). 

 Nicolas, Bull. hist. nat. soc Afrique du Nord, 5, 37 (1913). Küster, Flora, iio, 1 

 (1917). Wheldale, Journ. of Genetics, 2, 369 (1916). Shibata, Journ. Biol. Chem., 

 28, 93 (1916). Everest, Proc Roy. Soc, 90, B, 261 (1918). Nicolas, Compt. rend., 

 165, 130 (1918). Vorkommen von isomerisiertem Anthocyanidin in lebenden Blättern: 

 NoACK, Ztsch. f. Bot., 10, 661 (1918), mit vielen anderen wichtigeren Befunden. Künst- 

 liche Erzeugung von gefleckten Blumenblättern bei Mohn: Molliard, Compt. rend. 

 Soc Biol., 82, 403 (1919). Freies Anthocyanidin in jungen Weinblättern: Rosenheim, 

 Biochem. Journ., 14, 178 (1920). 



p. 694. Algenchromatophoren. — Der „Augenfleck" bei Algen und Flagellaten 

 wahrscheinlich ein Chromoplast: Rothert, Ber. bot. Ges., 32, 91 (1914). Irisierende 

 Körper der Florideen: Faber, Ztsch. f. Bot., 5, 801(1913). Chromatische Adaptation: 

 Tobler, Naturwiss., i, 845 (1913). Boresch, Ber. bot. Ges., 37, 25 (1919 und unveröff. 

 Beobachtungen), hat die chromatische Adaptation für einige bestimmte Blaualgen 

 nachgewiesen. — Nachweis des Chlorophylls bei Braunalgen: Willstätter, Lieb. Ann., 

 404, 237 (1914). Das Chlorophyll y von Tswett ist kein natürlicher Farbstoff; Chloro- 

 phyll b fehlt hier fast ganz, nur 5% vorhanden. Eigenschaften des Fucoxanthins. 

 Über die Farbenänderung beim Abtöten: Atkins, Sei. Proc. Roy. Dublin Soc, 14 

 Czapek, Biochemie der Pflanzen. 3. Aufl., III. Bd. 50 



