Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 797 



ellipsoideus: Amato, Zentr. Bakt., II, 42, 689 (1915). — Pilze: Zellner, Sitz.ber. 

 Wien. Akad., IIb, 124, 225 (1915); Ebenda, 126, 183 (1917); Ebenda, 127, 411 (1918). 



— Lecithinumsatz bei der Keimung: Zlataroff, Biochem. Ztsch., 75, 200 (1916). 

 Glycerophosphatase in Samen: Nemec, Biochem. Ztsch., 93, 94 (1919); Bull. soc. chim. 

 (4), 27, 153 (1920). Lecithinspaltendes Enzym in Blut und Chylus: Thiele, Biochem. 

 Journ., 7, 275 (1913). Phosphatidase: Delezenne, Bull. soc. chim. (4), 15, 421 (1914). 



p. 783. Cerebroside. — Cerebrosidartiger Stoff aus ungeschältem Reis: Trier, 

 Ztsch. physiol. Chem., 86, 406 (1913). Aus Pemcillium glaucum: Sullivan, Biochem. 

 Bull., 3, 87 (1913). — Die Sp; Itung des tierischen Kephalins liefert Oxyäthylamin: 

 Baumann," Biochem. Ztsch., 54, 30 (1913), eventuell Aminoäthylalkohol: Renall, 

 Ebenda, 55, 296 (1913), ferner Stearinsäure: Parnas, Ebenda, 56, 17 (1913). Levene, 

 Journ. Biol. Chem., 26, 419 (1913). Übersicht über Cerebroside bei Fuchs in Abder- 

 haldens biochem. Handlexikon, 8, 469 (1913). Thierfelder, Ztsch. physiol. Chem., 

 89, 236 (1914). — Ferner: Mac Arthur, Journ. Amer. Chem. SoC, j6, 2397 (1914). 

 Levene, Journ. Biol. Chem., 24, 111; 41, 63, 69 (1916); 25. Ö17 (1916); 26, 115 (1916); 

 31, 627, 635 u. 649 (1917); 33, 111 (1917); 35, 285 (1918). Mac Arthur, Journ. Amer. 

 Chem. Soc, 38, 1375 (1916). Pearson, Biochem. Journ., 8, 616 (1914). Rosenheim, 

 Ebenda, 9, 103 (1915); 10, 142 (1916). Brigl, Ztsch. physiol. Chem., 95, 161 (1915). 



— Sullivan, Journ. Ind. Eng. Chem., 8, 1027 (1916), fand Lignocerinsäure in faulendem 

 Eichenholz und denkt an deren Bildung aus cerebronsäuieartigen Stoffen. 



p. 784. Sterinolipoide der Pflanzen. — Übersicht: Fodor in Abderhaldens 

 biochem. Handlexikon, 8, 473 (1913). Einteilung: Doree, Biochem. Journ., 7, 616 (1913). 

 Marcusson, Chem.-Ztg., 41, bll (1917). — Darstellung und Bestimmung: Hepburn, 

 Biochem. Bull., 2, 467 (1913); Journ. Franklin Inst, 176, 405 (1913). Lifschütz, 

 Biochem. Ztsch., 54, 212 (1913). Spektroskopische Methode: Schreiber, Münch. 

 med. Woch.sch. (1913), p. 2001. Grigaut, Compt. rend. Soc. Biol., 73, 200 (1913). 

 LiFSCHÜTZ, Münch. med. Woch.sch. (1913), p. 2346. Hess-Thaysen, Beitr. z. physiol. 

 Chem. d. Cholesterins, Habil.sch. Kopenhagen 1913; Biochem. Ztsch., 62, 89 (1914). 

 Lifschütz, Ebenda, p. 219; Ber. chem. Ges., 47, 1453 (1914). Weston, Journ. Med. 

 Res., 29, 457 (1914). Berg u. Angerhausen, Chem. Ztg., 38, 978 (1914). Klostermann, 

 Ztsch. Unt. Nähr., 27, 713; 28, 138 (1914). Ölig, Ebenda, 28, 129 (1914). Die Digi- 

 toninfällung kann schon aus dem unverseiften Material erfolgen. Matthes, Arch. 

 Pharm., 252, 694 (1914). Kuhn u. Wewerinke, Ztsch. Unt. Nähr., 28, 369 (1914). 

 Wagner, Ebenda, 30, 265 (1915). Mueller, Journ. Biol. Chem., 25, 549 (1916). Wind- 

 aus, Ztsch. physiol. Chem., loi, 276 (1918). Mueller, Journ. Biol. Chem., 30, 39 

 (1917). Lifschütz, Ztsch. physiol. Chem., loi, 89 (1918). Csonka, Journ. Biol. Chem,, 

 34, bll (1918), für die nephelometrische Bestimmung. Fex, Biochem. Ztsch., 104, 

 82 (1920). Kolorimetrische Methoden bei Weston, Journ. Biol. Chem., 28, 383. Nephelo- 

 metrie: Csonka, Ebenda, 41, 243 (1920). Die Digitoninmethode empfiehlt sich weitaus 

 am meisten. — Nachweis: Kühn, Bengen u. Wewerinke, Ztsch. Unt. Nähr., 29, 

 321 (1915). Fritzsche, Ebenda, p. 150. Prescher, Ebenda, 33, 77. Pfeffer, Ebenda, 

 31, 38 (1916). ZwiKKER, Pharm. Weekbl., 54, 101 (1917). Mueller, Journ. Biol. Chem., 

 30, 39 (1917). Preöcher, Ztsch. Unt. Nähr., 32, 553 (1916). — Farbenreaktion mit 

 Dimethylsulfat: Rosenheim, Biochem. Journ., 10, 176 (1916). — Nach Berczeller, 

 Biochem. Ztsch., 66, 218 (1914), lassen sich kolloide Cholesterinlösungen soweit reinigen, 

 daß sie wirklich hydrophob sind und die Oberflächenspannung des Wassers fast gar nicht 

 herabsetzen. — Synthetische d-Glucoside von Cholesterin, Sitosterin: Salway, Journ. 

 Chem. Soc, 103, 1022 (1913). — Auch die Fettsäure-Cholesterinester geben Lieber- 

 manns Cholestolprobe: Autenrieth, Münch. med. Woch.sch. (1913), p. 1776. Flüssige 

 Krystalle: Gaubert, Bull. soc. Franc. Mineral., 35, 64 (1913). — Cholesterinester: 

 Mair, Journ. Pathol. and Bact., 18, 185 (1913). Oxycholesterinester aus Gehirn: 

 Rosenheim, Biochem. Journ., 8, 74 (1914). — Wollfett: Röhmann, Biochem. Ztsch., 

 77, 298 (1916). — Oxycholesterin: Lifschütz, Ztsch. physiol. Chem., 92, 383 (1914); 

 93, 209 (1914); Biochem. Ztsch., 52, 206 (1913). Bariummethylatverbindung: New- 

 berry, Journ. Chem. Soc, 105, 380 (1914). — a-Cholestanol ist nach Windaus, Ber. 

 chem. Ges., 46, 2487 (1913), nur ein Isoamylderivat von Cholesterin und ohne weiteres 

 Interesse. Oxydation von Cholesten: Windaus, Ber. chem. Ges., 47, 1229 (1914). — 

 /?-Cholestanol: Überführung von Cholesterin in Koprosterin: Windaus, Ber. ehem. 

 Ges., 47, 2384 (1914). Ellis u. Gardner, Biochem. Journ., 12, 72 (1918). Koprosterin: 

 Gardner u. Godden, Ebenda, 7, 588 (1913). Windaus, Ber. chem. Ges., 48, 651 (1915); 

 49, 1724 (1916); Nachr. Ges. Göttingen 1916, p. 92. Oxydation mit Chromsäure: Wind- 

 aus, Ber. chem. Ges., 48, 851 (1915). Umwandlung in Cholansäure: Wind aus, Ebenda, 

 52, 1915 (1919); Nachr. Ges. Göttingen 1919, p. 157; Ber. chem. Ges., 53, 614 (1920). — 

 Energische Oxydation mit Salpetersäure: Windaus, Ztsch. physiol. Chem., 102, 160 

 (1918), führt zu Dinitroisopropan, Bernsteinsäure, Methylbernsteinsäure, Methylglutar- 

 säure. Ferner Westphalen, Ber. chem. Ges., 48, 1664 (1915). Minovici, BuI. de Chim., 



