gQO Nachträge, Ergänzungen und Berichtigungen. 



Hbyktewiecki, Kosmos, Lemberg, 38, 1468 (1913). Der Wurzelfarbstoff aus der 

 Scrophulariacee Escobedia scabrifolia: ,,Palillo", ,.Azafran", gibt eine blaue Reaktion 

 mit Schwefelsäure: Hartwich, Schweiz. Apoth.-Ztg. 1914, Nr. 21. — Carotin aus Rinder- 

 gallensteincn: H. Fischer u. Rose, Ztsch. physiol. Chem., 88, 331 (1913). Carotin und 

 Xanthophyll in Butterfett, corpus luteum, Blutserum: ,,Lactochrom" aus Milchmolke, 

 wahrscheinlich mit Urochrom identisch: Palmer u. Eckles, Journ. Biol. Chem., 17, 

 191, 211, 223, 237 u. 245 (1914). Stammt aus der Nahrung. Carotinoid der Chryso- 

 meliden: Schulze, Sitz.ber. naturforsch. Freunde 1914, p. 398. — Das Xanthophyll 

 in Eigelb, Körperfett und Blutserum des Huhnes ist mit dem pflanzlichen Xanthophyll 

 identisch: Palmer, Journ. Biol. Chem., 2j, 261 (1915); Ebenda, 27, 27 (1916). — Carotin- 

 gewebe der Käferflügeldecken: Kremer, Zoolog. Jahrb., 41, 175 (1919). Die Lipophoren 

 bei Reptilien: Schmidt, Ztsch. wiss. Mikrosk., 33, 29 (1918). Der rote Farbstoff der 

 Crustaceen: Verne, Compt. rend. Soc. Biol., 83, 963 (1920). Die Lipochrome des Blut- 

 serums und deren Funktion: Hymans van den Bergh u. Muller, Akad. Wet. Amster- 

 dam, 28, 612 (1920); Biochem. Ztsch., 108, 279 (1920). — Früchte: Nach Duggar, 

 Washington Univ. Stud., i, Nr.. 1 (1913), wird das (von ihm in ,,Lycopersicin" um- 

 benannte) Tomatenpigment in unreifen Früchten bei Temperaturen oberhalb 30" in 

 der Ausbildung gehemmt. In sauerstoffreier Atmosphäre unterbleibt die Rötung. — 

 Momordica-Arillen zeigen die Farbstoffhemmung durch höhere Temperatur gleich- 

 falls, nicht ajier die Früchte von Capsicum. Der Farbstoff von Capsicum ist von Lyco- 

 pin verschieden: Atkins u. Sherrard, Sei. Proc. Roy. Soc. Dublin, 14, 328 (1915). 

 Über das Vorkommen und die Verbreitung von Lycopin vgl. Lubimenko, Rev. g6n. 

 Bot., 25 bis, 475 (1914). Das Caroten in der Hagebuttenfruchtschale: Kryz, Ztsch. 

 Unt. Nähr., 38, 364 (1919). — Krystallis. CaroteU im Sauni der Nebenkrone von Nar 

 cissus poeticus: Molisch, Ber. bot. Ges., 36, 281 (1918). — Über das Crocetin Jius Safran: 

 Decker, Arch. Pharm., 252, 139 (1914). Nachweis von Crocetin: Tunmann, Apoth.- 

 Ztg., 1916, 31, 237. — Vorkommen von Caroten in fetten Ölen: Gill, Journ. Ind. Eng. 

 Chem. 10, 612 (1918). -- Algen: Bedingungen der Hämatochrombildung bei Haemato- 

 coccus pluvialis: Pringsheim, Beitr. z. Biol., d. Pfl., 12, 413 (1915). Nahrungsmangel 

 begünstigt. — Caroten bei Fusarium: Bezsonow, Compt. rend., 159, 448 (1914). Rote 

 Formen von Torula: Schimon, Dissert. Techn. Hochschule München 1911. Chapman, 

 Biochem. Journ. , 10, 548 (1916). Carotinkrystalle bei Humaria und Ascophanus: 

 Boedyn u. Overeem, Hedwigia, 59, 307 (1918). 



p. 811. Vegetabilische Wachse: Ad. Grün, Abderh3,ldens Biochem. Handlexi 

 kon, 8, Abi (1913). — Bienenwachs: Fischer, Ztsch. öffentl. Chem., 20, 313, 409 (1914). 

 Seifert, Seifensied.-Ztg. (1913), p. 1029. — Ryan, Sei. Proceed. Roy. Dublin Soc, 



12, 210 (1909). Fischer, Ztsch. öffentl. Chem., 21, 177 (1915). Fabris, Staz, Sper. 

 Agr. ital., 48, 595 (1915). Gadamer, Arch. Pharm., 255, 425 (1917). Buchner, Chem.- 

 Ztg., 42, 373 (1918). Bohrisch, Pharm. Zentr. Halle, 60, 455 (1919). Chinesisches 

 Wachs: Gascard, Compt. rend., 170, 1326 (1920). Ghedda wachs enthält keinen Myri- 

 cylalkohol: Buchner u. Fischer, Ztsch. öffentl. Chem., 19, 147 (1913); Ztsch. angew. 

 Chem., 28, 303 (1915). Lipp u. Kovacs, Journ. prakt. Chem., 99, 243 (1919). Lipp u. 

 Casimir, Ebenda, p. 256. — Ferner über tierisches Wachs bei Tachardia lacca: Gas- 

 card, Compt. rend,, 159, 258 (1914). Wachsdrüsen und Wachsausscheidung bei Psylla 

 alni: W. Brenner, Ztsch. wiss. Insekt. Biol., 13, 6 (1917). — Über den Melissylalkohol 

 aus Bienenwachs und Carnaubawachs vgl. Heiduschka u. Gareis, Journ. prakt. 

 Chem., 99, 293 (1919). Gascard, Compt. rend., 170, 886 (1920). — Mikrochemie: 

 Molisch, Mikrochemie d. Pfl., Jena 1913, 111. — Carnaubawachs: Lüdecke, Seifen- 

 sied.-Ztg., 41, 4 (1914). — Candelillawachs enthält nach H. Meyer u. Soyka, Monatsh. 

 f. Chem., 34, 1159 (1913), 18—20% Harz, 74—76% Dotriakontan CjjHee, F 71« und 

 5 — 6% eines Oxylactons, wenn nicht identisch so isomer mit Lanocerinsäurelacton 

 CjoHsgOg. Auch A. Zimmermann, Der Pflanzer, 8, 249 (1912). Farcy, Ann. des Fälsific, 



13, 97 (1920). — Wachs von Kapokfaser nach Matthes u. Streicher, Arch. Pharm., 

 251, 438 (1913): Palmitinsäure, 1% Linolensäure, 38% I^inolsäure und 61% Ölsäure. 

 Leinen- und Hanffaser: Bianchi u. Malatesta, Ann. di chim. appl., j, 281 u. 297 (1917). 

 — Hopfenexfcrakt: wenig Cerotinsäurecetylester, Cerylalkohol, Hentriakontan, Cerotin- 

 säure: Power, Tutin u. Rogerson, Journ. Chem. Soc, joj 1267(1913). — Juniperus- und 

 Sabinasäure:BouGAULT, Journ. Pharm. etChim.(7), 1,425 (1910), CHsOH.(CH4),4. GOCH 

 und CHjOH . (CH2)io • COOH, Oxypalmitin- und Oxylaurinsäure. Das Oxydations- 

 produkt der Juniperussäure ist identisch mit Thapsiasäure. Die Sabinasäure liefert 

 die bisher nur synthetisch bekannte Dekamethylendicarbunsäure. — Wachs von Blättern. 

 Mesembryanthemum: Zwicky, Dissert. Zürich 1914. Verschiedene Vorkommnisse bei 

 Keegan, Chem. News, 11 1, 289 (1915); 112, 203 (1915); Chem. Zentr. 1916, 1, p. 125L 

 Espartogras: Budde, Journ. Soc. Chem. Ind., 35, 401 (1916). Für Primula, Rumex, 

 Narcissus: Keegan, Chem. News. 114, 74 (1916). Empetrura: van Itallie, Pharm. 

 Weekbl., 55., 709 (1918). Helinus: Goodson, Journ. Chem. S.oc, 117, 140 (1920). — 



