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verständlich nicht zu denken. Übrigens bezeugen andere Reaktionen 
als die Volhardsche und diejenige mit der Alkalischmelze, welche 
beide äußerst empfindlich sind und schon Bruchteile eines Milli- 
gramms einer Manganverbindung angeben, daß die braune Masse 
rings um den Körper von Coeconeis wahrscheinlich fast ausschließ- 
lich aus Manganhydroxyd bestand. 
Nun fragt es sich, auf welche Weise unsere Diatomee zu ihrer 
Manganhülle gekommen ist. Geschah dies durch Vermittlung anderer 
Lebewesen, z. B. Bakterien, und wenn das nicht zutreffen sollte, 
darf man nicht die Ursache in einer eigentümlichen, etwa sapro- 
phytischen, Lebensweise der Alge suchen? 
In betreff der ersteren Möglichkeit muß ich betonen, daß das 
seichte Seewasser, in welchem sich die Cladophora-Rasen befanden, 
rein, nicht verunreinigt war — wenigstens war sein Zustand gar 
nicht verdächtig — und der ganze Fall unterschied sich infolge- 
dessen klar von denjenigen, wo verschiedene Algen an Örtlichkeiten 
angetroffen werden, welche an diversen organischen, sich zer- 
setzenden etc. Stoffen überreich sind. Ahnliche Fälle, z. B. Mangan- 
und Eisen-Ausscheidungen zwischen den Individuen von Cocconeis 
pediculus an Üladophora glomerata im Süßwasser, kamen mir 
öfters vor; immer war aber da eine so große Menge Bakterien, 
darunter auch Eisenbakterien, unter den Cocconeis-Individuen vor- 
handen, daß an eine aktive Teilnahme der Diatomeen an der Aus- 
scheidung der erwähnten Hydroxyde schwer zu denken war. Nun 
schien es mir wichtig zu erfahren, ob nicht auch hier in den 
Manganscheiden kleine Bakterien stecken. Zu diesem Zwecke, sowie 
auch behufs zytologischer Untersuchung habe ich die Manganaus- 
scheidungen rings um den Üocconeis-Leib mit verschiedenen, die 
Zellenstrukturen nicht verletzenden Mitteln zu lösen versucht. Das 
gelang vollkommen mit Tanninlösungen, welche dazu noch den 
Vorteil bieten, daß sie zugleich zur Beizung benützt werden können. 
(Auch frisch gefälltes Mn [OH], wird von Tanninlösungen zwar lang- 
sam, aber mit der Zeit vollkommen gelöst.) 
Im ganzen habe ich die nachstehenden Färbemethoden an- 
gewendet, nämlich für: 
1. Stärke in Oladophora: starkes Jodjodkalium; 
2. Chloroplasten in Oladophora: S-Fuchsin (ohne Beizung) 
12 Stunden (gute Differenzierung im Wasser); 
3. Zellkerne in Oladophora: Jodgrün (12 Stunden) oder Licht- 
grün (24 Stunden); 
4. Chromatophoren in Cocconeis (1 Stunde lang mit 2% 
Tannin gebeizt): S-Fuchsin 24 Stunden; 
5. Zellkerne, event. Nukleolen in Cocconeis (1 Stunde lang 
mit 2% Tannin gebeizt): Toluidinblau, Liehtgrün; 
6. epiphytische Bakterien auf Cladophora: S-Fuchsin (12 bis 
24 Stunden) oder Toluidinblau (kurze Zeit färben, event. in Alkohol 
differenzieren). 
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