Über die Gehirne der Küchenschabe und des Mehlkäfers. DTU 
Vom Goldkäfer, Cetonia aurata, wurden Larven im Juni aus 
Ameisenhaufen ausgegraben. Diese wurden teils nach Abpräparieren 
des Chitins geschnitten, teils ließ ich sie sich verpuppen und bewahrte 
die Puppen in feuchter Erde im Zimmer auf. Mitte September 
schlüpften die Käfer aus, jedoch mit bereits hartem Chitin, so daß 
Präparation notwendig war. 
Bei der Fixierung machte ich bald dieselben Erfahrungen wie 
H. v. Auten (1910), nämlich daß bloße Alkoholkonservierung die Um- 
risse und Lageverhältnisse der Teile gut erkennen, aber feinere Struktur- 
verhältnisse verloren gehen läßt. Am geeignetsten erwies sich auch 
bei mir 10%ige Formollösung. In dieser verblieben die Köpfe 4—20 
Stunden, je nach der Größe des Objektes und der Möglichkeit des 
Eindringens der Flüssigkeit. Gewöhnlich lieferten 6 Stunden das 
günstigste Resultat. Bei längerem als eintägigem Verweilen in For- 
mol löst sich die Nervensubstanz in ein Netzwerk auf, in dem sich 
die zusammengehörigen Teile immer schwerer erkennen lassen. Von 
Formol ging ich durch Alkohol und Xylol zu Paraffin über, das vom 
Schmelzpunkt 52 und 58 gemischt benutzt wurde. Härtere Sorten 
ergeben Schwierigkeiten beim Schneiden und erreichen doch die Härte 
des Chitins nicht. Geschnitten habe ich gewöhnlich mit dem Juns- 
schen Mikrotom, selten mit dem ZIMMERMANNschen nach Minor. Es 
wurden möglichst drei Schnittrichtungen innegehalten (auf das ganze 
Tier bezogen): horizontal (parallel dem Boden), frontal (senkrecht zur 
Längsachse und zum Boden), sagittal (parallel zur Längsachse und 
senkrecht zum Boden). Die Schnittdicke betrug 5, 7,5 oder 10 u. 
Als zweckmäßigste Färbung ergab sich bald das MALLorYsche 
Gemisch in Verbindung mit Eosin oder Säurefuchsin. Durch Zufall 
fand ich, daß eine kurze Zwischenfärbung mit DELAFIELDschen Häma- 
toxylin zur besseren Hervorhebung der Kerne des Ganglienzellen- 
belags sehr zweckmäßig ist. Ich kam dadurch zu folgender Reihe 
der Reagentien: Eosin 20—30 Minuten, Aqua dest, Hämatoxylin 
ca. 30 Sekunden, Wasser, Phosphormolybdansäure 1°/,ig 2—3 Minuten, 
Wasser, MAatLLorysches Gemisch!) ca. 6 Sekunden, Wasser, Alkohol, 
Xylol. Mit dieser Färbung erhielt ich sehr schöne Bilder, besonders 
für den Faserverlauf?). Die farbigen Tafeln sollen diese Färbung 
wiedergeben. Außerdem wurden Eosin, Säurefuchsin und Ammonium- 
rubinpikrat je mit Hämatoxylin benutzt. Mit der Ararmuyschen Nach- 
vergoldung erhielt ich ebenfalls eine recht brauchbare Faserfärbung. 
Die bisherigen Arbeiten über das Blattidengehirn. 
Die Geschichte der Erforschung des Orthopterengehirns 
wurde erst 1913 von KÜHNLE ausführlich dargestellt, so daß ich 
2) Einzelne Neurone in ihrer ganzen Ausdehnung zu färben, 
gelingt allerdings bei den Insekten mit dieser Methode ebensowenig 
wie mit anderen Methoden. 
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