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blätter als Futter für die Nacht. Ein Entweichen 

 der Raupen war unmöglich, weil die 8 cm hohe 

 Wand des Porzellangefäßes das Emporkriechen 

 unmöglich machte. 



Und dennoch waren am nächsten Morgen sämt- 

 liche sechs Schwärmerraupen spurlos verschwunden, 

 während der Bestand der im Drahtzylinder lebenden 

 Cuc. argentea- Raupen anscheinend nicht weiter 

 zurückgegangen war. Einige Mausexkremente, die 

 auf dem Waschtisch lagen, zeigten mir die Anwesen- 

 heit dieses kleinen Nagers an und am Abend stellte 

 ich, um mich zu überzeugen, in dem Waschbecken 

 eine kleine Mäusefalle auf. Schon um 1 1 Uhr abends, 

 als das Badezimmer noch erleuchtet war, war der 

 Raupenräuber in Gestalt einer fetten Maus gefangen. 

 Diese hatte zweifellos nicht nur die sechs Schwärmer- 

 raupen verzehrt, sondern auch vorher den Bestand 

 der CucuUia argentea-Raupen dezimiert, wohin sie 

 sich unter dem Gazezylinder durch den losen Sand 

 gewühlt hatte. 



Nachdem die letzten Argentea verpuppt waren 

 und der Zylinder entfernt war, machte ich wieder 

 die Wahrnehmung, daß oben auf dem Sand leere 

 Gespinste sowohl von Cuc. argentea als auch von 

 Fidonia fasciolaria und Tephr. innotata, die ich eben- 

 falls auf derselben Nährpflanze gezogen hatte, um- 

 herlagen. Ich stellte fest, dai3 die Gespinste gewalt- 

 sam geöffnet und des Inhalts beraubt waren. Auch 

 diesen Räuber fing ich in der nächsten Nacht, es 

 war wieder eine Maus. 



Bringen Schlupfwespenlarven die bewohnten 

 Raupen stets zum Absterben? 



Von H. Marotvski, Berlin. 



Im September 1913 fand ich auf Zitterpappel 

 einige Smerinthus populi- Raupen von auffallend 

 bläulich-grüner Grundfarbe und mit je vier Reihen 

 lilafarbener Flecken. An allen entdeckte ich die 

 schwarzvernarbten Schlupflöcher der die Smerinthus- 

 Raupen heimsuchenden Mikrogasterlarven, die also 

 den Raupenkörper bereits verlassen hatten. Die 

 Raupen selbst wajen erwachsen und saßen unbeweg- 

 lich an den kahlgefressenen Zweigen. Wegen ihrer 

 auffallenden Färbung und Zeichnung nahm ich vier 

 Stück davon mit und brachte sie zu Hause, von 

 den übrigen gesondert, in ein Zuchtglas. Von dem 

 ihnen gereichten Futter haben sie nichts berührt, 

 dahingegen waren drei von ihnen nach mehreren 

 Tagen verschwunden, während die vierte oben auf 

 dem Sande lag und verendet war. Nach ca. zwei 

 Wochen konnte ich die drei fehlenden als wohl- 

 gebildete lebende Puppen aus dem Sande nehmen. 



Auskunftstelle des Int. Entomol. Vereins. 



Antwort 



auf die Anfrage bezüglich ,,Waschens und Des- 



infizierens gebrauchter Insekt e nzucht- 



kasten" in Nr. 2, vom 11. April d. J. : 



Im Entora. Verein ,, Apollo" zu Frankfurt a. M. 

 (Entom. Zeitschr. Guben 1912, pag. 138) führte Herr 

 Vogt über die „Reinigung der Zuchtbehälter" 

 nachfolgendes aus: Zur Entfernung von Staub und 

 kleinen Lebewesen aus den Zuchtgeräten genügt eine 

 gründliche Reinigung mit Seife und Wasser. 



Anders ist die Sache bei den Bakterien, bei denen 

 ein Antiseptikum anzuwenden ist. Für Gläser ist 

 eine Reinigung mit Salzsäure zu empfehlen; auch 

 kann man kleine Behälter, Blechdosen, ■ Blumen- 

 töpfe etc. im Bratofen durch reichliche Erhitzung 

 völlig von den Bakterien befreien. Für größere 

 Zuchtbehälter empfiehlt sich eine dunkeMila, für 

 Gläser eine lichtere Lösung von übermangan- 

 saurem Kali. Die ins Holz eingedrungene Lösung 

 -soll für die Zucht durchaus unschädlich sein. Das 

 sicherste Mittel ist eine regelrechte Formal-Des- 

 infektion. Für die zur Freilandzucht verwendeten 

 Mullbeutel empfiehlt Herr Heinzel die Desinfektion 

 durch Auskochen, Dampf oder For malin. 



In der ,, Zeitschr. f. wissensch. Insektenbiologie" 

 1911, Heft 10, pag. 323 berichtet Herr H. Cornelsen 

 (Herne) über günstige Erfolge der Desinfektion mit 

 Guajacol. Die Wände des Zuchtbehälters wurden 

 mit zwei Tropfen bestrichen, ohne daß die Raupen 

 durch den üblen Geruch in ihrer Frelälust beein- 

 trächtigt wurden. Da Guajacol noch in 2000facher 

 Verdünnung sogar Tuberkelbazillen tötet, so reichen 

 auch die zwei Tropfen hin, etwaige Keime zu ver- 

 nichten. Auch wird das Ausschwefeln der 

 Gläser empfohlen. Fachlehrer Mitterberger, Steyr. 



Als Antwort auf die Frage in Nr. 2 vom 

 11. April: ,,Wer nennt ein gutes Mittel zum Waschen 

 und Desinfizieren gebrauchter Insekten-Zuchtkästen" 

 teile ich mit : Meines Wissens ist das bestbewährte 

 Mittel für verseuchte Zuchtkästen zum Desinfizieren 

 ,,Formalin", welches mit Wasser verdünnt werden 

 muß. Hiermit alle Wände wie Teile besonders von 

 innen mit einem Pinsel 2 — 3 mal fest bestreichen, 

 darnach der Sonne oder heißen Ofenhitze aussetzen. 

 Binnen längstens 8 Tagen ist der Gegenstand wieder 

 brauchbar, Formalin ist in jeder Drogerie erhältlich. 

 Carl Höfer sen., Klosterneuburg bei Wien. 



In Spulers Werke : ,,Die Schmetterlinge Europas" 

 gibt Dr. med. Fischer in dem Kapitel ,,Die Krank- 

 heiten der Raupen" folgendes Verfahren zum Des- 

 infizieren der Zuchtbehälter an : 



,,Manverschaffe sich einen sogenannten Zerstäuber 

 (Rafraichisseur) mit Doppelballon (Richardson'schem 

 Gummigebläse) und fülle das dazu gehörige Fläschchen 

 mit folgender, am besten jeweilen frisch bereiteter 

 Mischung: Gleiche Teile starken (96°/o) Alkohols 

 und einer 20 "/o wässerigen Fomalinlösung (Formalin 

 und Wasser zu gleichen Teilen, da Formalin oder 

 Formol selber 40 "/o Formaldehyd enthält). Damit 

 wird der Behälter außen und besonders innen überall 

 (am Boden, an allen Wänden, Winkeln und Ecken) 

 so lange bespritzt, bis er sichtlich benetzt erscheint, 

 worauf er zum Trocknen so lange im Freien, am 

 besten in Zugluft oder im Winde aufgestellt wird, 

 bis er den Formalingeruch verloren hat, was meistens 

 schon nach einigen Stunden der Fall ist. Damit ist 

 die Desinfektion fertig und der Behälter wieder für 

 die Zucht verwendbar. 



Sind die Wände der Zuchtkasten durch die Ent- 

 leerungen der Raupen beschmutzt, so werden vor 

 der Desinfektion die Drahtgitter und alle Holzteile 

 mit heißem Soda- oder Seifenwasser und Bürste ge- 

 reinigt, Gazewände am besten durch neue ersetzt." 



Pur die Redaktion des wissenschaftliolieii Teiles: Dr. F. Meyer, Saarbrücken, Bahnholstraße 65. — Verlag der Entomologischen Zeitsohritt: 



Internationaler Bntomologisoher Verein E.V., Prankfurt a. M. — Für Inserate: GesohftftssteOe der Entomologischen Zeitschrift, Seheidswald- 



straße 35 (Eeinh. Döpp jr.). — Druck yon Aug. Welsbrod, Prankfurt a. M., Buchgasse 12. 



