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s'accomplit, se montre l'action des agents déterminant la coloration en 

 commençant par la cavité abdominale où se trouvent les deux grands 

 stigmates. Ces phénomènes, la nymphose et le changement de colo- 

 ration, celui-ci élant dû à un enzyme oxydant, sont donc intimement 

 liés entre eux. Pour cette raison il est important de rechercher si les 

 mêmes moyens par lesquels on empêche la coloration de la pâte larvaire 

 et celle delapupe, moyens par lesquels on supprime l'action d'enzymes 

 (oxydases), sont également propres à supprimer la nymphose. S'il en 

 était ainsi, ces moyens devraient arrêter la nymphose de larves en pleine 

 maturité, sans cependant détruire tout de suite, ou peu de temps après 

 leur application, la vie de celles-ci. 



Dans une première communication, j'ai déjà démontré que des larves 

 de mouches enfermées dans de petits tubes cessent de se nymphoser 

 tout en restant vivantes. Le même phénomène a pu être constaté pour 

 les chenilles de Pieris brassicae. Pour cette dernière espèce, j'ai parfois 

 obtenu des chrysalides restant molles et dont la moitié postérieure du 

 corps était allongée et cylindrique, rappelant les formes propres à la 

 chenille. En continuant ces premières recherches, j'ai empêché des lar- 

 ves de mouches de se nymphoser par un bain d'huile d'olive que je leur 

 fis prendre deux ou même trois fois par jour. Le même résultat fut 

 obtenu lorsque je couvris le fond du bocal dans lequel je tenais les 

 larves d'une couche d'eau suffisante pour couvrir seulement une partie 

 de la larve, et laissant l'autre partie libre. Pour en citer un exemple, 

 j'ai pu empêcher pendant vingt jours des larves de Musca carnaria de se 

 nymphoser, tandis que des témoins formèrent leurs pupes dans trois 

 jours. Dans des solutions faibles de chlorure de sodium on obtient des 

 résultats analogues. Quant à l'influence de l'acide hydrocyanique, j'ai 

 essayé de tenir les larves de mouches prêtes à se nymphoser dans une 

 atmosphère, de ce gaz. Mais comme il est très difficile de doser la quan- 

 tité de ce dernier, les résultats que j'ai pu obtenir jusqu'à présent ne 

 sont pas concluants. 



11 serait peut-être plus facile de conserver les larves pendant une 

 période suffisamment longue dans une atmosphère chargée d'acide acé- 

 tique; mais la saison étant déjà trop avancée, la nymphose normale 

 commença à tarder et à rester incertaine. Pour combler cette lacune, 

 j'ai remplacé les larves de mouches par des chenilles de Pieris brassicae 

 auxquelles j'ai injecté une forte goutte d'acide acétique d'une concen- 

 tration variable en leur introduisant sous la peau un tube de verre 

 effilé. En outre, des blessures furent faites à des témoins par l'intro- 

 duction du tube effilé, sous la peau, sans injection du liquide. Ces 

 témoins donnèrent un peu plus de 50 p. 100 de chrysalides. D'autre part, 

 des chenilles qui avaient reçu une injection d'acide acétique de 

 0,25 p. 100 et de 1 p. 100 donnèrent en moyenne 13 p. 100 de chrysa- 

 lides; des chenilles traitées avec de l'acide acétique à 1,6 p. 100 n'en 



