SÉANCE DU 7 MARS 305 



mètre cube de la solution d'Azur II, et on verse le liquide colorant sur 

 la lame porte-objet recouverte de sang desséché et fixé. Au bout de 

 quinze à trente minutes, on lave à l'eau et on sèche (1). 



J'ai essayé de colorer par ce procédé différents Hématozoaires; on 

 verra par le tableau suivant que les résultats n'ont pas été satisfaisants 

 en général; je dois dire que, dans la plupart des cas, il s'agissait de sang 

 desséché depuis plusieurs mois, condition peu favorable à la coloration 

 mais qui se présente souvent dans la pratique. 



i° Sang palustre avec de grands corps araiboïdes et des formes en voie de 

 segmentation. Au bout d'une demi-heure, la coloration est insuffisante, on 

 ne distingue pas les karyosomes. Au bout d'une heure, coloration assez bonne ; 

 on voit les karyosomes des corps amiboïdes, mais ils sont trop pâles. 



2° Sang palustre avec corps en croissant. Au bout d'une demi-heure, colo- 

 ration insuffisante; au bout d'une heure, coloration encoi^e insuffisante; on 

 ne voit pas les karyosomes des corps en croissant. 



3° Sang de pigeon avec Hœmamœba Danileioskyi. Au bout d'une heure, la 

 coloration est tout à fait insuffisante. Les noyaux des hématies eux-mêmes 

 sont mal colorés. 



4° Piroplasmose canine, frottis du foie. Au bout d'une demi-heure, colora- 

 tion insuffisante. Au bout d'une heure, la coloration est assez bonne, mais les 

 noyaux se différencient mal du protoplasme. 



5° Sang avec trypanosomes du Nagana ou du Caderas. Après une heure de 

 séjour dans le bain colorant, les trypanosomes sont à peine teintés; on ne 

 distingue pas les noyaux. 



On voit que le procédé de Giemsa est tout à fait insuffisant pour la 

 coloration de certains Hématozoaires et que, pour la coloration des 

 autres, son action est lente et souvent imparfaite. 



J'ai eu l'idée d'utiliser l'Azur II en le substituant au bleu de méthy- 

 lène à l'oxyde d'argent, dans le procédé de coloration que je préconise 

 depuis plusieurs années (2). J'ai obtenu de très bons résultats en opé- 

 rant de la manière suivante. 



On prépare, au moment de s'en servir, le mélange colorant qui suit : 



Solution d'éosine à t p. 1000 .... 2 centimètres cubes. 



Eau distillée 8 — 



Solution aqueuse d'Azur II à 1 p. 100. 1 centimètre cube. 



On mélange avec soin et on plonge, dans le bain colorant, la prépa- 

 ration de sang desséché et fixé à l'alcool absolu. 



Au bout de dix minutes, on lave à l'eau et on verse sur la lame 

 quelques gouttes d'une solution de tanin à 5 p. 100 qu'on laisse agir 

 deux à trois minutes; après quoi on lave de nouveau et on sèche. 



(i) Giemsa. Cenlralbl. f. Bakter., Originale, Bd. XXXII, S. 307. 

 (2) A. Laveran. Société de Biologie, 9 juin 1900. 



