DAS UROGENITALSYSTEM VON AMPULLARIA (ilGAS Spix 



Dieser letztere Umstand war, unter anderem, eine der Ursachen, warum es mir 

 lange nicht gelang, ein brauchbares Narkotisierungsmittel für das Tier zu finden. Es 

 nimmt in seine Lunge ein genügendes Quantum atmosphärische Luft auf und kann 

 dann des Wassers entbehren. Ein im Wasser gelöstes Narkotisierungsmitti I bleibt somit 

 ohne Wirkung. Angesichts der Wichtigkeit, bei morphologischen Untersuchungen gut 

 fixierte Gewebe zur Beobachtung zu haben, was mit dem Narkotisieren eng zusammen- 

 hängt, will ich hier die von mir gebrauchte Methode etwas ausführlicher darlegen. 



Nach vielen Versuchen mit den gewöhnlich gebrauchten Narkotika, wie Schwefel- 

 aether. Hydroxylamin, Alkohol u. a., war ich bei i % Cocainlösung stehen geblieben, 

 als einem Mittel, das mir verhältnismässig bessere Resultate gab. Es gelang mir aber 

 ersl dann, besonders gute Resultate zu bekommen, als ich diese i % Cocainlösung 

 nicht mit kaltem, sondern mit warmem Wasser gebrauchte. Eine Schale enthaltend 

 ca. 200 ccm. warmes Wasser mit dem zur Narkotisierung bestimmten Tiere wird auf 

 den Thermostat gestellt, auf dem die Temperatur ca. + 30° C. ist. Die Wärme 

 veranlasst das Tier, seine Schale zu verlassen und am Boden und an den Wänden des 

 Gefässes herumzukriechen. Nach dem Herumkriechen, das gewöhnlich etwa Yz Std. 

 dauert, bleibt das Tier schliesslich irgendwo auf dem Boden schön ausgestreckt liegen. 

 Jetzt wird das Cocain ins Wasser gegeben, erst allmählich, etwa 5 — 10 Tropfen jede 

 5 — 10 Min., später je 10 Tropfen vielleicht mit den gleichen Pausen, und so fort, bis zu 

 ca. 100 Tropfen. Nachher verbleibt das Tier in der Lösung bis zum nächsten Morgen 

 auf dem Thermostat. Am Morgen ist es gewöhnlich schön ausgestreckt und so weit 

 betäubt, dass man es töten kann, ohne dass es sich in die Schale zurückzieht. Dabei 

 muss aber doch möglichst vorsichtig vorgegangen werden, weil bei einer starken 

 Erschütterung das Tier sich zurückziehen kann. 



Das Abtöten geschah in heissem Wasser von 70 — 8o° C, zu welchem etwas 

 Chromsäure hinzugefügt wurde. 2 — 3 Min. genügen vollständig um das Tier zu töten. 



Die herauspräparierten Organe fixierte ich gewöhnlich in conc. wässer. Sublimat- 

 lösung mit 5 — 10 % Eisessig. Diese Methode gab mir immer schöne Resultate. Ausserdem 

 verwendete ich auch andere Fixierungsmittel, wie Zenker'sche Flüssigkeit für die Niere, 

 Flemming'sche Flüssigkeit für Hoden u. a. 



Bei den Färbungen gebrauchte ich immer die Methode der Schnittfärbungen, 

 welche den richtigen Grad der Färbung zu kontrollieren erlaubt. Zum Färben der 

 Kerne wurden von mir verschiedene Hämatoxyline verwendet : Eisen-Hämatoxylin nach 

 Heidenhain, Ehrlich's Hämatoxylin, Hämalaun nach P. Mayer. Am schärfsten färbte, 

 wie immer, das Eisen-Hämatoxylin, besonders solche Präparate wie Schnitte durch 

 den Hoden in verschiedenen Stadien der Spermatogenese. Als Plasmafarben wurden 

 hauptsächlich Eosin und Säurefuchsin verwendet. 



Beim Färben verschiedener Drüsengewebe erhielt ich sehr gute Resultate durch 

 Dreifachfärbung mit Biondi'schem Gemisch. Das Fixiren und Färben geschah nach 

 den Vorschriften, die Lee und Mayer in ihrem Buch (30) über die mikroskopische 

 Technik geben. Alle Zeichnungen wurden mit dem Abbe'schen Zeichenapparat an- 

 gefertigt. 



Im Anschluss an diese Ausführungen über die Technik will ich für die Ratschläge, 

 welche mir Herr Dr. M. Kupfer, Assistent des Zoologischen Institutes in Zürich, 

 in der Mikrotechnik und ganz besonders in der Technik des Zeichnens erteilte, meinen 

 herzlichen Dank aussprechen. Nur diese Zeichnungsmethode ermöglichte mir, das 

 Charakteristische eines jeden Gewebes möglichst genau und getreu wiederzugeben. 



