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körper« des Zellkerns und die Volutinkörner gleich gefärbt und hielt sie deshalb für sub- 

 stantiell gleich. Er betrachtete das Volutin als im Zellkern entstandene und in das Cyto- 

 plasma mechanisch vorgeschobene, ausgeflossene Chromatinkörpersubstanz des Zellkerns (S. 8). 

 Er hat das Volutin nicht mikrochemisch untersucht, sondern hat nur den Chromatinkörper 

 der Pilzkerne und den Nucleolus der Zellkerne der Wirthspfianze verglichen. 



B. Saccharoniycetes. 



Es wurde Saccltaromyces ellipsoideus benutzt, welcher drei Tage bei 28° und einen Tag 

 bei 15° in Traubenmost gezüchtet worden war. Die Volutinkörner dieser Zellen, welche 

 nicht doppelbrechend und farblos sind, lassen sich im ungefärbten Zustande schwierig vom 

 Fett unterscheiden. Sie liegen theils im Cytoplasma, vorzüglich oft zu vielen zusammen, 

 dicht an den Vacuolenwänden, theils einzeln in Zellsaftvacuolen. In manchen Zellsaftvacuolen 

 scheint gelöstes Volutin vorzukommen, wenigstens finden sich Vacuolen, deren Inhalt sich 

 relativ intensiv mit Methylenblau färbt, nicht selten. Neben dem Volutin findet sich reichlich 

 Glycogen, oft in Form unregelmässig begrenzter, recht weicher Massen, oft in Form dichter 

 Klumpen (Fig. 9gr), die hier und da auch in Zellsaftvacuolen liegen können. Das Fett lässt 

 sich in Form kleiner Tropfen, welche meist an der Peripherie der Vacuolen liegen, mit 

 Sudan- oder Naphtholblau (Meyer 1903) leicht nachweisen (Fig. 9/'). Den Kern konnte ich 

 leicht in jeder Zelle nachweisen, wenn ich mit Wasser kurz aufgekochtes Material einen Tag 

 in Heidenhain'scher Eisenalaimlösung stehen liess, kurz abspülte, einen Tag mit der 

 Hämatoxylinlösung beizte und auf dem Objectträger unter Deckglas einige Minuten mit der 

 Eisenalaunlösung differenzirte. Da Glycogen und Volutin nach dieser Methode entfernt 

 werden, so tritt der Kern allein homogen gefärbt hervor (Fig. Qk). Die Abbildung des 

 Kerns, welche Guillier mond (1902, Taf. III, Fig. 42 — 48) giebt, ist richtig, und aus den 

 Angaben dieses Autors lässt sich schliessen, dass Volutinkörner im Kerne nicht vorkommen. 



Alle Reactionen bieten wegen der Form und Grösse des Objectes und der Beschaffen- 

 heit der Membran und des Protoplasten einige Schwierigkeiten, die aber zu überwinden sind. 



Eeaction I. Die directe Färbung des Volutins in lebenden Zellen mit Methylenblau 

 j _|_ |() gelingt bei Saccltaromyces ellipsoideus relativ schlecht (viel leichter bei gewöhnlicher 

 Bierhefe), besser mit einer Methylenblaulösung 1 + 10, der man auf 10 ccm 20 Tropfen 

 öliges Natriumcarbonat zugesetzt hat. Es handelt sich um eine Krankfärbung; die Er- 

 krankung der Zelle tritt in der Lösung 1 + 10 schwer ein, und deshalb erfolgt das Ein- 

 dringen des Farbstoffes relativ schwierig. Ausserdem nimmt das Cytoplasma den Farbstoff 

 leicht in grösserer Menge auf, so dass kein deutliches Hervortreten des Volutins stattfindet. 

 Man findet aber stets nach 1 / i — 1 Stunde eine Anzahl von Körnern relativ dunkel gefärbt, 

 welche sich mit l^iger Schwefelsäure nicht entfärben. Auch angetrocknetes und am Deck- 

 glas durch Durchziehen durch die Flamme fixirtes Material färbt sich selbst nach einer 

 Stunde unter Methylenblau 1 -f- 10 manchmal nicht gleichmässig durch, wenn auch meist in 

 vielen Zellen Volutinkörner sehr dunkel gefärbt hervortreten. 



Rührt man die Hefenzellen mit einem Tropfen Formol an, lässt 10 Minuten stehen und 

 setzt dann doppelt so viel Methylenblau 1+10 hinzu, so erscheint nach 1 Minuten das Volutin 

 nieist intensiv gefärbt, während das Cytoplasma noch ungefärbt ist. Setzt man zu dem mit 

 Methylenblau l + 1 durchgefärbten Materiale 1 % ige Schwefelsäure hinzu , so bleiben die 

 Volutinkörner höchst intensiv gefärbt, das Cytoplasma entfärbt sich. Die Körner erscheinen 

 jetzt unregelmässig geformt, manchmal mit einer centralen Höhlung. Fügt man 5_%'ige 

 Schwefelsäure hinzu, so entfärben sich die Körner, werden kleiner und lassen nach 5 Minuten 



