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zur Hand nahm. Wenn ich inficirte Blätter 

 von Arisarum, die durch längeres Liegen in 

 Alkohol entfärbt waren, einige Zeit in Was- 

 ser legte, dann die Epidermis der Blattunter- 

 seite vorsichtig abzog und nun das ganze 

 Blatt mittelst Hämatoxylin färbte, so erhielt 

 ich Präparate, die ein genaues Studium des 

 Parasiten noch im Innern des Nährblattes, 

 also in völlig intactem Zustande, erlaubten*). 

 Aus frischen Blättern dagegen ist es äusserst 

 schwierig und kaum möglich, einzelne 

 Schläuche mit intactem Zustande des Plasma- 

 inhaltes zu genauerer Untersuchung zu brin- 

 gen. Durch die Präparation werden die 

 Schläuche vielfach zerrissen und zerknickt, 

 unregelmässige Strömungen des Protoplasmas 

 hervorgerufen und dadurch weitreichende 

 Störungen in der normalen Anordnung des- 

 selben bewirkt, was alles an jenen Präparaten 

 nicht vorkommen kann. Diese letzteren wur- 

 den gewöhnlich in Wasser oder in Glycerin 

 untersucht, doch wurden zum Vergleich auch 

 einzelne der gefärbten Blätter in Nelkenöl 

 gebracht, was eine Durchforschung des gan- 

 zen intacten Blattes bis in alle Einzelheiten 

 erlaubte. 



Da zeigte sich denn zunächst, dass die Bil- 

 dung der Sporen keineswegs ausschliesslich 

 in der äusseren Schicht des Protoplasmas allein 

 stattfindet. Der ganze Schlauch vielmehr ist 

 vollgepfropft mit Protoplasma, und dieses 

 gesammte Protoplasma zertheilt sich in 

 Sporenanlagen **) , nur die Hautschicht bleibt 



*) Ich bediene mich zum genaueren Studium der 

 Gestaltungsvorgänge im Protoplasma nach wie vor mit 

 bestem Erfolge der Tinction gehärteter Präparate und 

 habe dabei bis jetzt noch immer diejenige Methode der 

 Präparation als die vorteilhafteste gefunden, die ich 

 in den Sitzungsberichten der Niederrh. Ges. f. Natur- 

 u. Heilkunde. 1880. S. 160— 161 (Sitzung v. 13. Juli) 

 beschrieben habe. Das Härten des Protoplasmas ge- 

 schieht am besten mittelst Pikrinsäure oder Chrom- 

 säure, in manchen Fällen auch mit Vortheil mittelst 

 Osmiumsäure oder Alkohol (welche letzteren Mittel 

 jedoch die feinere Gestaltung des Protoplasmas nicht 

 immer unverändert erhalten). Solehe Präparate kön- 

 nen dann mittelst Hämatoxylin, Karmin, Methylgrün 

 oder anderer Anilinfarben, Nigrosin u. s. w. distinct 

 gefärbt werden, je nachdem im einzelnen Falle das 

 eine oder das andere Färbungsmittel das günstigste 

 Resultat ergibt. Ich selbst bediene mich bei meinen 

 Untersuchungen hauptsächlich des Hämatoxylins und 

 zwar in der Anwendungsweise, die ich I.e. beschrie- 

 ben habe, da ich finde, dass die Färbung mitHämatein- 

 Ammoniak vor allen übrigen Hämatoxylin-Lösungen, 

 die man sonst vorgeschlagen hat, Hämatoxylin- Alaun, 

 Kleinenberg'scher Hämatoxylin-Lösung u. s.w., 

 weitaus den Vorzug verdient. 



**) Gegenüber der Angabe von Just: «Zur Zeit der 

 Sporenbildung bleibt auch nach Anwendung aller 



zurück und ausser einzelnen Fetttropfen und 

 Stärkekörnern nur vereinzelte , mehr oder 

 minder reichliche, krümliche Reste, die, zwi- 

 schen den Sporen vertheilt, eine spärliche 

 Zwischensubstanz darstellen. — Die gebil- 

 deten Sporen stellen zunächst kleine, selb- 

 ständig abgegrenzte, nackte Protoplasmakör- 

 per dar; dann umgibt sich jede selbständig 

 mit Membran. Von einer gemeinsamen tren- 

 nenden Zellhaut zweier Sporen, die sich »auch 

 sofort in zwei Lamellen« spaltete, habe ich 

 nichts gesehen , ebenso wenig wie — Just 

 selbst, der ausdrücklich sagt : »Dies ist direct 

 bei der ausserordentlichen Zartheit der Mem- 

 bran, auch mit stärksten Systemen (Zeiss' 

 Immersion L.) nicht sichtbar« (S. 20). — 



Im Protoplasma jüngerer Schläuche hat 

 Just »nach manchen vergeblichen Versuchen« 

 »das Auftreten vieler Zellkerne« »durchAnwen- 

 dung von Hämatoxylin ebenfalls nachweisen« 

 können. Nachher, mit Beginn der Sporenbil- 

 dung, sollen dieseKerne schwinden, die Spo- 

 ren sicher kernlos sein. Meine entgegengesetz- 

 ten Angaben sollen auf Irrthum beruhen. 



Ein ungünstiges Geschick hat Just mit- 

 gespielt, dass er seine Angaben über die Zell- 

 kerne von Phyllosiphon eingeleitet hat mit 

 dem Geständniss, er habe erst »nach manchen 

 vergeblichen Versuchen« die Zellkerne in den 

 jüngeren Theilen der Schläuche nachzuwei- 

 sen vermocht. Denn gerade hier in den jün- 

 geren Theilen der Schläuche von Phyllosiphon 

 sind die Zellkerne ausserordentlich leicht 

 nachzuweisen (mittelst derFärbungsmethode, 

 die ich in derselben Abhandlung beschrieben 

 habe, welche meine bestrittenen Angaben 

 über die Zellkerne von Phyllosiphon enthält) . 

 Wer hier erst »nach manchen vergeblichen 

 Versuchen« zum Ziele gelangt, der dürfte 

 allerdings in sehr vielen Fällen nach den Zell- 

 kernen der Thallophyten vergeblich suchen. 

 Und dürfte es unter diesen Umständen auch 

 nicht auffallend sein, dass es Just nicht ge- 

 lungen ist, in den älteren Theilen d erSchläuche 

 zur Zeit der Sporenbildung und in den Spo- 

 ren selbst die Zellkerne nachzuweisen. 



In Wirklichkeit aber sind in den jugend- 

 lichen Zweigspitzen von Phyllosiphon die 

 Zellkerne mittelst Hämatoxylin ausseror- 



üblichen Aufhellungsmittel der Inhalt der Schläuche 

 so wenig durchsichtig, dass ich über diesen Punkt 

 keine Klarheit gewinnen konnte« (S. 22), sei noch 

 einmal ausdrücklich auf die Aufhellung intensiv ge- 

 färbter Präparate mittelst ätherischen Oeles (Nelkenöl 

 etc.) hingewiesen. 



