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Verkorkung gellt sehr unregelmäßig vor sich, es bleiben anfangs Lücken; bald ist jedoch 

 eine vollständig verkorkte einschichtige Scheide hergestellt (Fig. 9). Die Verkorkung greift 

 jetzt auf die benachbarten Zellschichten über — zum Teil ist dies auch schon früher geschehen — , 

 und die verkorkte Schicht wird immer mächtiger. Gleichzeitig werden starke Zellulose- 

 verdickungen aufgelagert, die später verholzen. Auf diese Weise entsteht eine bis zehn 

 Schichten dicke, einheitliche, stark sklerotische Interkutis (Fig. 10). 



Kroemer (1904 S. 37), der zuerst die Interkuten genauer studiert hat, fand bei den 

 Wurzeln folgende Interkutisarten : die einschichtige einheitliche Interkutis und die 

 mehrschichtige einheitliche Interkutis (beide bestehen ausschließlich aus verkorkten 

 Zellen), ferner die Kurzzelleninterkuti s und die gemischte Interkutis, in der ver- 

 korkte Zellen neben unverkorkten vorhanden sind. Von diesen Interkuten kommen nach meinen 

 Untersuchungen bei den Achsen nur die einheitlichen Interkuten vor. Kurzzelleninterkuten, 

 die für die Wurzel so charakteristisch sind, kommen bei Achsen nie zur Ausbildung. Eine 

 streng einschichtige Interkutis hat nur Paris quadrifolia im Rhizom. Alle übrigen Interkuten, 

 die als Hypodermen bei Monokotyledonenachsen auftreten, sind mehrschichtig. Mehrschichtige 

 Interkuten ohne stärkere Zelluloseauflagefungen fand ich bei Carex arenaria (3 — 5 schichtig), 

 Carex vidpina, Carex leporina, Carex paniculata, Heleocharis palustris (3 — 4 schichtig), Luzida 

 campestris, Smilacina stellata (4 — 5 schichtig), Typha angustifolia (3 — 4 schichtig). Interkuten 

 mit Zelluloseverdickungen, die im späteren Alter verholzen, haben Asparagus officinalis, 

 Allium fallax und Ällium Schönoprasum (beide nur an älteren Rhizomteilen), Iris Pseud-Acorus 

 (wenigschichtig), Iris graminea und Iris sibirica (beide 10 — 12 schichtig), Triticum repens 

 (2 — 3 schichtig). Die Zellen der Interkutis von Paris quadrifolia enthalten häufig Raphiden- 

 büschel, die an der äußeren Zellwand sitzen. Verkorkte Hypodermen kommen fast aus- 

 schließlich bei unterirdischen Achsen vor, in vereinzelten Fällen (Interkutis im Halm von 

 Carex arenaria) auch bei oberirdischen; bei untergetauchten Achsen sind sie meines Wissens 

 überhaupt nicht vorhanden. 



3. Das Periderin. Periclerm kommt, ausschließlich bei unterirdischen Achsen, nament- 

 lich dicken Rhizomen vor. Mit Periderm überzogene Achsen verraten sich meist schon 

 äußerlich durch eine hell- bis dunkelbraune Farbe. Die Dicke der Korkschicht schwankt 

 zwischen 1 und 30 Zellen; besonders dick wird sie bei Iris- Arten, Anthericum Liliago, Aroideen. 

 Die Korklamellen der Korkzellen des Periderms sind häufig ziemlich dick und geben die 

 S. 55 angeführten Reaktionen. Sie enthalten in der Regel viel schmelzbare Korkstoffe und 

 sind sehr widerstandsfähig gegen Chromsäure. Die Mittellamellen sind meist verholzt; doch 

 können sie auch unverändert bleiben, z. B. bei Anthericum Liliago, Anihericum ramosum. 

 Zelluloseauflagerungen in den Korkzellen des Periderms habe ich nur bei Anihericum Liliago 

 und Yucca flaccida gefunden. 



Bei Monokotyledonen mit Dicken Wachstum , Yucca, gloriosa, Yucca flaccida, entsteht 

 durch Verkorkung der äußersten Partien der in Radialreihen angeordneten Rindenzellen eine 

 Metakutis. Bei Yucca flaccida sind die metakutisierten Zellen mit ungetüpfelten Zellulose- 

 verdickungen versehen. Eine Metakutisierung von Epidermiszellen, die einen Übergang zum 

 Periderm bildet, findet sich an den unterirdischen Teilen des Stengels von Asparagus officinalis. 

 Dort findet man in der Regel sämtliche Epidermiszellen mit Suberinlamellen versehen. Stellen- 

 weise treten auch Tangentialteilungen der Epidermiszellen und eventuell auch des darunter- 

 liegenden Gewebes ein, so daß wir an diesen Stellen eine Peridermbildung vor uns haben. 



Peridermbildung tritt bei folgenden Monokotyledonen regelmäßig auf: Älocasia odorata 

 (van Tieghem 1866 S. 92), Agave americana (Mangin 1882 S. 337), Anthericum Liliago, 

 Anthericum ramosum, Arum itälicum, Arum maculatum, Asphodeline liburnica, Colocasia anii- 



