63 



64 



Fig. 7. Ein folgendes Stadium, mit merklicher Con- 

 traction der Vacuolen. 



Fig. 8. Ein ähnliches Stadium, s röhrenförmige 

 Vacuolen. Die Vacuolen a, b, c in C schmelzen zu d 

 und c in D und zu e (c) in E zusammen. 



Fig. 9. Sehr starke Aggregation. Die Vacuolen wer- 

 den von deutlichen Protoplasmakörnchen mitgeführt. 

 In der unteren Hälfte schmelzen sie zusammen. E 1—6 

 rasche Formänderungen der in D abgebildeten röh- 

 renförmigen Vaeuole. 



Fig. 10. Oberer Theil einer Zelle mit starker Aggre- 

 gation. Die Vacuolen werden offenbar von unsicht- 

 baren Protoplasmaströmchen mitgeführt. DieZustände 

 A — I wurden in einer Viertelstunde durchlaufen. 



Fig. 11. a röhrenförmige Vacuolen, b dieselben nach 

 der Einschnürung, c nach der Durchsehnürung. 



Fig. 12. Eine Zelle mit starker Aggregation ; in der 

 unteren Hälfte die Vacuolen von einem deutlichen 

 Strömchen mitgeführt. 



Fig. 13. Eine ähnliche Zelle, durch vorsichtiges 

 Erwärmen bis auf die Vaeuole a getödtet. Die Vaeuole 

 b war bei c zerrissen. 



Fig. 14. Eine ähnliche Zelle, aber durchschnitten. 

 Eine Vaeuole, welche erst bei a, b lag, trat unter dem 

 Druck des Deckglases aus der Zelle heraus. 



Fig. 15. Starke Aggregation. Nachher Plasmolyse in 

 5proc. KN0 3 . 



Fig. 16. Ebenso in lOproc. KN0 3 . 



Fig. 17. Ebenso in lOproc. essigsaurem Natron. 



Fig. 18. Starke Aggregation. Nachher in essigsau- 

 res Kupfer gebracht. Nur in den Vacuolen entsteht 

 der Niederschlag von gerbsaurem Kupfer. 



Fig. 19. A eine Zelle ohne Aggregation; durch 

 Zusatz von kohlensaurem Ammoniak ist ein anfangs 

 feinkörniger Niederschlag im Zellsaft entstanden. jS 

 dieser ballt sich zu grösseren Kugeln zusammen. 



Fig. 20. Unvollständig zusammengeballte Kugeln 

 desselben Niederschlages. 



Fig. 21. Kugeln dieses Niederschlages, durch Druck 

 auf das Deckglas zu sternähnlichen Formen ein- 

 gerissen. 



Fig. 22. Aehnliehe Kugeln in einer durch Aggre- 

 gation verkleinerten Vaeuole. 



Fig. 23. Einwirkung von Essigsäure auf diese 

 Kugeln, sie werden zuerst roth, dann allmählich ent- 

 färbt und bekommen Höhlungen im Innern. 



Fig. 24. Dasselbe; A und B zwei Kugeln, a vor 

 Einwirkung der Essigsäure, b dieselben nach der Ein- 

 wirkung, «dieselben noch später. Dauer der Beobach- 

 tungen etwa 10 Minuten. 



Fig. 25. Einwirkung von kohlensaurem Ammoniak 

 auf eine schwach aggregirte Zelle ; A vor der Einwir- 

 kung, E beim Anfang, C etwas später. Im Zellsaft 

 entsteht der sich zusammenballende Niederschlag. Der 



Pfeil bedeutet die Richtung, in der das Reagens 

 vorschreitet. 



Fig. 26. Dasselbe in einer stärker aggregirten Zelle. 

 Bedeutung des Pfeiles wie in Fig. 25. In A ist die 

 obere Grenze des Niederschlages nach 4, 6, 8 und 9 

 Minuten angegeben. B etwa nach einer Viertelstunde; 

 der Niederschlag hat sich zusammengeballt. 



Fig. 27. Aehnlicher Zustand; der Niederschlag ist 

 auf die untere Hälfte der stark aggregirten Zelle 

 beschränkt geblieben.. 



Fig. 28. Aehnlicher Zustand. Kugeln des Nieder- 

 schlages in kleinen Vacuolen. 



Zur Technik und Kritik der Bakterien- 

 methode. 



Von 



Th. W. Engelmann. 



(Schluss.) 



Noch ein anderer Punkt kommt hier in 

 Betracht. Der Eintritt der Reaction ist im 

 Allgemeinen um so schwieriger scharf zu be- 

 obachten, je geringer im entscheidenden 

 Augenblicke die physiologische Helligkeit 

 der entsprechenden Spectralpartie. Bei sehr 

 geringer Helligkeit kann deshalb die Bewe- 

 gung früher aufzuhören scheinen als in der 

 That der Fall ist. Sehr auffällig zeigt sich 

 dieser Einfluss, wenn man durch ein zwischen 

 Auge des Beobachters undOcular eingeschal- 

 tetes farbiges oder Rauch-Glas das Bild plötz- 

 lich verdunkelt. Es entsteht dann der Ein- 

 druck, als ob die Bakterienbewegung plötz- 

 lich abnehme. Umgekehrt wird beim Weg- 

 ziehen eine Beschleunigung der Bewegung 

 vorgetäuscht. Hierzu kommt noch, dass bei 

 geringer, aber übrigens gleicher Helligkeit 

 die Schärfe der Unterscheidung merklich von 

 der Farbe abhängig, im Roth beispielsweise 

 geringer wie im Grün ist. Es erwächst hier- 

 aus einige Gefahr, für die dunkleren, nament- 

 lich die rothen Partien des Spectrums zu 

 grosse Spaltweiten einzustellen. 



Um zu prüfen, in wie weit etwa hierdurch 

 die Ergebnisse beeinflusst werden könnten, 

 habe ich die Helligkeiten möglichst gleich 

 zu machen gesucht, indem ich für die Mes- 

 sungen im Gelb und Grün blau resp. roth 

 gefärbte Gläser zwischen Auge und Ocular 

 einschaltete und speciell abwechselnd mit 

 und ohne Glas an den nämlichen Stellen des 

 Spectrums beim gleichen Objecte Messungen 

 anstellte. Bei einigermaassen scharfem Be- 

 obachten der Bakterien zeigte sich jedoch 

 kein deutlicher Einfluss , wie ich durch viele 

 Zahlenbeispiele belegen könnte. 



