Lepeschkin, Kenntnis des Mechanismus der Variationsbewegungen etc. 325 



in diesen Versuchen ausgeführt wurde (die Salpeterkonzentration 

 wurde von ihm nur bis 0,5 °/ bestimmt); vielleicht übte auch das 

 Zusetzen eines Anilinfarbstoffes zur plasmolysierenden Lösung- (1. c. 

 26, 27, 31 u. a.) einen schädlichen Einfluß auf die Zellen, die da- 

 her anders reagieren konnten, aus. 



Wenden wir uns jetzt der dritten Methode zu. Die Versuche 

 wurden folgendermaßen ausgeführt: Das betreffende Gelenk wurde 

 mit dem Mikrotom in Querschnitte (0,08 mm Dicke bei Phaseolus 

 und 0,04 mm Dicke bei Mimosa), aber nur bis zur Hälfte seiner 

 Länge zerlegt (siehe auch S. 322). Die Schnitte wurden teilweise 

 sofort zur Bestimmung des Salpeterwertes des Zellsaftes, größten- 

 teils aber zur nachfolgenden Bestimmung des isotonischen Koeffi- 

 zienten von Salpeter im Lichte (diffuses Tageslicht) verwendet. 

 Die andere zurückgebliebene Gelenkhälfte mit dem Blattstiele wurde 

 in mit Wasserdampf gesättigte Atmosphäre gebracht und entweder 

 sogleich verdunkelt oder bis zum Eintritt der Dämmerung in 

 diffusem Tageslicht belassen, um nachher verdunkelt zu werden. 

 Die Verdunklung dauerte 2 Stunden. Danach wurde das Ganze 

 ins dunkle Zimmer gebracht (die Versuche wurden im Juni in 

 St. Petersburg angestellt und es war im Arbeitszimmer nicht ge- 

 nügend dunkel) und die Gelenke bei Kerzenbeleuchtung (eine Kerze 

 im Abstände von 6 Meter) in Querschnitte zerlegt. Die Schnitte 

 wurden teilweise sofort zur Bestimmung des Salpeter wertes des 

 Zellsaftes, größtenteils aber zur nachfolgenden Bestimmung des 

 isotonischen Koeffizienten von Salpeter im Dunkeln verwendet. 



Die Zylindergläschen mit plasmolysierenden Lösungen befanden 

 sich in einer schwarzen Schachtel. Das Mikroskopieren fand bei 

 Kerzenbeleuchtung statt und dauerte höchstens 1 — l l l 2 Minuten. 



In meinem oben zitierten Aufsatze wurde darauf hingewiesen, 

 daß sich die Konzentration des Zellsaftes der Gelenke in plas- 

 molysierenden Zuckerlösungen eben so rasch vermindert wie in 

 reinem Wasser. Bei der Bestimmung des Zuckerwertes der Ge- 

 lenkzellen muß man daher die erhaltenen Zuckerkonzentrationen 

 stets auf die Exosmose der Zellsaftstoffe korrigieren. Um aber 

 diese Korrektur, welche nur sehr annähernd gemacht werden kann, 

 zu vermeiden, wurden in meinen Versuchen die Salpeterkonzen- 

 trationen sofort nach der Feststellung der Zuckerkonzentrationen 

 bestimmt, d. h. die Konzentrationen beider Stoffe, welche dem Zell- 

 saft der Gelenkschnitte nach dem Verbleiben derselben während 

 einer gewissen Zeit in den plasmolysierenden Zuckerlösungen iso- 

 tonisch waren, festgestellt. Die erhaltenen Salpeterkonzentrationen 

 bedürfen dagegen keiner Korrektur, weil die Saftkonzentration in 

 den plasmolysierenden Salpeterlösungen unverändert bleibt (s. oben). 



Nach dem Zerlegen des Gelenkes in Querschnitte wurden die 

 letzteren in Zuckerlösungen, welche sich um 0,6 °/ unterschieden, 

 gebracht und verblieben dann gewöhnlich 1 Stunde 10 Min. bis 

 1 Stunde 40 Min. (Phaseolus) oder 20— 30 Min. (Mimosa) m diesen. 1 ) 



x ) Diese Zeit reichte zum Annehmen einer Kugelform durch den plas- 

 molysierten Protoplasten aus. Die Plasmolyse im Falle von Mimosa wurde nur 

 an den Gerbstoff ballen enthaltenden Schnittzellen beobachtet. Die Zellen, welche 

 keine Gerbstoffballen mehr enthielten, wurden als absterbend betrachtet, 



