380 Lepeschkin, Kenntnis des Mechanismus der Variationsbewegungen etc. 



befanden und voneinander um 0,01 % im Falle von Salpeter, und 

 um 0,05 °/ im Falle von Zucker unterschieden, durch Verdünnung 

 einer Ausgangslösung vorbereitet. Dann folgte die Konzentrations- 

 bestimmung', welche gewöhnlich gleichzeitig an 5 — 8 Epidermis- 

 schnitten gemacht werden konnte. Die Konzentrationen der Lö- 

 sungen von Salpeter und Zucker, in welchen nur die Hälfte der Zellen 

 des zu untersuchenden Epidermisschnittes plasmolysiert war, wurden 

 als die dem Zellsaft des betreffenden Schnittes isotonischen Kon- 

 zentrationen angenommen. Diese Konzentrationen konnte man sehr 

 leicht bis 0,01 °/ Salpeter und 0,05% Zucker bestimmen. So war 

 das Verhältnis der plasmolysierten Zellen zu derjenigen der nicht 

 plasmolysierten in einem der Schnitte in der 1,12% Salpeterlösung 

 ungefähr gleich 2 : 3, während dieses Verhältnis in der 1,14% Lö- 

 sung schon 4:1 war. Wenn auch in der 1,13% Salpeterlösung 

 dieses Verhältnis nicht genau 1 : 1 war, so wurde doch diese Kon- 

 zentration als die isotonische angenommen, weil die dritte Zahl 

 hinter dem Komma nicht berücksichtigt zu werden brauchte. 



Um eine Korrektur der Salpeterendosmose in den Zellsaft 

 während der Plasmolyse zu vermeiden, folgte die Bestimmung der 

 isotonischen Zuckerkonzentration direkt nach der Plasmolyse mit 

 Salpeter. Die Bestimmung der isotonischen Salpeterkonzentration 

 verlangte gewöhnlich 50 — 60 Minuten, während die Zuckerplasmolyse 

 gewöhnlich nur 30 — 45 Minuten erforderte. Das Mikroskopieren 

 wurde unter der Vergrößerung 1 : 150 gemacht. 



Die Versuche über die Lichteinwirkung auf die Permeabilität 

 der Plasmamembran der Tradescantia-Zellen wurden in der fol- 

 genden Weise ausgeführt: 



Zunächst wurden isotonische Koeffizienten von Salpeter für 

 5 — 8 Epidermisschnitte, welche von einer sich in zerstreutem 

 Tageslicht befindenden Pflanze entnommen waren, bestimmt; die 

 Pflanze wurde gleichzeitig ins Dunkle gebracht, wo sie IV2 Stunde 

 verblieb; alsdann wurden 5 — 8 neue Epidermisschnitte von derselben 

 Blattrippe entnommen, und jetzt die isotonischen Koeffizienten im 

 Dunkeln bestimmt. In anderen Versuchen wurden aber Epidermis- 

 schnitte von der belichteten Pflanze entnommen und jeder Schnitt 

 in zwei gleiche Teile geteilt; von den auf solche Weise erhaltenen 

 Schnitthälften wurden die einen 1 ^2 Stunden im zerstreuten Tages- 

 licht belassen, die andern aber ins dunkle Zimmer gebracht, wo 

 sie auch D/2 Stunde verblieben. Darnach wurden die isotonischen 

 Koeffizienten an den Schnitten beider Portionen bestimmt. 



In den Versuchen dritter Art, welche besonders überzeugend 

 waren, wurden die Epidermisschnitte, nachdem die isotonischen 

 Koeffizienten an ihnen im Lichte bestimmt waren, in Wasser ge- 

 bracht (Deplasmolyse), ins dunkle Zimmer übertragen und nach 

 Verlauf von D/2 — 2 Stunden von neuem untersucht, indem man 

 nun die isotonischen Koeffizienten an denselben Schnitten jedoch 

 im Dunkeln bestimmte. Die gleichen Versuche wurden auch in 

 umgekehrter Kichtung gemacht, d. h. zunächst bestimmte man die 

 isotonischen Koeffizienten im Dunkeln und nachher an denselben 

 Schnitten im Lichte. Das Mikroskopieren im Dunkeln fand bei 



