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0. Meyerhof: 



Bedarf 10 oder 20 ccm für die Milchsäurebestimmung entnommen, der Rest in 

 einem Porzellanschälchen bis zur Vertreibung des Alkohols eingedampft, etwas 

 Talkum und Äther zugesetzt und dieser verdampft (um die Fette zu koagulieren), 

 durch ein kleines Faltenfilter filtriert; nach wiederholtem Nachspülen zum Fütrat 

 etwas Mercuriacetat in wenig Wasser und so viel Soda zugesetzt, daß der Nieder- 

 schlag schwach gelb wurde (gegen Lackmus annähernd neutral); nach längerem 

 Stehen filtriert, Schwefelwasserstoff durchgeleitet, das Filtrat erst durch einen 

 Luftstrom von Schwefelwasserstoff befreit, dann in einem Porzellanschälchen auf 

 etwa 20 ccm eingedampft, soviel Salzsäure zugegeben, daß die Konzentration 

 2proz. wurde, in einem Kölbchen mit aufgesetztem Glasrohr (als Rückflußkühler) 

 2 Stunden in kochendem Wasserbad erhitzt, neutralisiert, filtriert, in einem 

 Meßkolben auf 50 ccm aufgefüllt und eine Doppelbestimmung der Glucose mit je 

 20 ccm gemacht. Bei Vergleich dieses erheblich abgekürzten Verfahrens mit der 

 Originalmethode von Parnas und Wagner ergab sich, wie die Übersicht der 

 Tabelle I zeigt, bei 2 Versuchen mit symmetrischen Froschschenkeln ein Defizit 

 meiner Methode von 3—4%. Dieses, nur leicht die Fehlergrenze übersteigend, 

 dürfte wohl auf die weniger gute Extraktion der nicht alkoholfällbaren Kohlen- 

 hydrate zu beziehen sein (vgl. auch vorige Seite Anm. 1). Bei seiner Konstanz und 

 Geringfügigkeit ist das aber kein großer Nachteil, und wir haben jetzt die Vorteile, 

 einmal im Muskelrüokstand tatsächhch das ganze Glykogen für sich zu gewinnen — 

 aus der Tabelle I ist zu ersehen, daß bei der Methode von Parnas etwa 10% des 

 Glykogens in den Wasserextrakt übergeht — und dann ohne weiteres in einem 

 aliquoten Teil die Milchsäure bestimmen zu können. Außerdem fällt das Kupfer- 

 oxydul in meinem Verfahren fast immer als roter Niederschlag gut filtrierbar aus, 

 bei der andern Methode wegen des Salzreichtums der Lösung dagegen als gelbes 

 schlechter filtrierbares Hydroxyd. 



Tabelle I. Glykogen- und übriger Kohlenhydratgehalt symmetrischer Frosch- 

 schenkel (ungereizt) nach Parnas' und Wagners Methode und meinem „ab- 

 gekürzten" Verfahren. 



Nr. 



Muskel- 













Datum 

 Methode 



gewicht 



(Zahl der 



Beine) 



] 



mg Glucose 



mg Glucose in 1 g 



Muskel 



1. 3. V. 1920 





Gly- 

 kogen 



Übrige 

 Khdt. 



Sa. 



Gly- 

 kogen 



übrige 

 Khdt. 



Sa. 



Parnas' M. ... 

 Meine M 



15.2 (3) 



15.3 (3) 



124 

 140 



44,6 

 25,3 



168,6 

 165,3 



8,15 

 9,15 



2,93 

 1,65 



11,08 

 10,80 



Differenz 



+ 1,00 



-1,28 



-0,88 



2. 15. V. 1920 

















Parnas' M. ... 

 Meine M 



18,8 (2) 

 18,6 (2) 



121 

 139,5 



44,8 

 17,0 



165,8 

 156,5 



6,43 



7,51 



2,39 

 0,92 



8,82 

 8,43 



Differenz 



+ 1,08 



-1,47 



-0,39 



Um einen genauen Vergleich von Milchsäure- und Kohlenhydratwerten zu 

 ermöglichen, müssen überdies die Gesamtverluste bei beiden Bestimmungen be- 

 rücksichtigt werden. Bei der Milchsäure ergab sich früher ein solcher von 16% 

 für die Verarbeitung des Extraktes und die Fürth-Charnas-Bestimmung und 

 von 4% für die im Muskelrückstand verbleibende Menge (letztere Größe wurde 

 in den vorigen Arbeiten nicht berücksichtigt). Als Gesamtdefizit wurde dieses 

 Mal 19—20% angesetzt und daher die Jodzahl, auf n/100 umgerechnet, mit 1,24 



