Veisiidie ziiiii Nachweis elektroosniDtischer Vurf^änge bei der Plasmolyse. 227 



hat. Als Versuchsobjekt dienten ausschließlich die Epidermiszellen der Blattmittel- 

 rippe von Rlioeo discolor^). 



Um die plasmol3d:ische Wirkung verdünnter Elektrolytlösungen untersuchen 

 zu können, war ich im allgemeinen gezwungen, nicht mit reinen Lösungen, sondern 

 mit Gemischen aus einem Elektrolyten und einem Nichtelektrolyten zu arbeiten. 

 Da Plasmolyse und Deplasmolyse bei verschiedenen Stoffen mit verschiedener 

 Geschwindigkeit erfolgt, darf man dabei nicht ohne weiteres beliebige Plasmo- 

 lytika miteinander kombinieren. In einigen Fällen (Methode A) habe ich daher 

 zwei solche Stoffe (z. B. Rohrzucker und Natriumeitrat oder Harnstoff und KCl) 

 gemischt, bei denen der Verlauf dieser Prozesse möglichst ähnlich ist, so daß man 

 annehmen kann, daß im Gemisch die plasmolytischen Wirkungen der beiden 

 Stoffe sich glatt addieren werden. In anderen Versuchsreihen (Methode B) habe ich 

 zunächst je zwei Schnitte in Rohrzuckerlösungen steigender Konzentration ein- 

 getragen und übertrug, als die Plasmolyse nach etwa 100 Minuten ihr Maximum 

 beinahe oder eben erreicht hatte, jeden zweiten Schnitt in eine Zuckerlösung der- 

 selben Konzentration, aber mit Zusatz einer konstanten Menge des betreffenden 

 Elektrolyten; da die in Rohrzuckerlösung plasmolysierten Protoplasten stunden- 

 lang ihr Volumen nicht ändern, kann in dieser Weise die plasmolytische Wirkung 

 des zugesetzten Elektrolyten genau studiert werden. Da bei der Verwendung von 

 Aluminium- oder Lanthansalzen eine Erstarrung der Protoplasten möglich er- 

 schien 2), war es bei diesen Salzen nötig, das Plasmolysegleichgewicht von zwei ver- 

 schiedenen Seiten aus zu erstreben. Einige Versuche wurden daher nach der 

 Methode A oder B ausgeführt, andere aber so (Methode C), daß zuerst sämtliche 

 Schnitte in Rohrzuckerlösung plasmolysiert wurden und dann teils in reine Zucker- 

 lösungen fallender Konzentration und teils in Gemische aus Zucker fallender 

 Konzentration plus dem betreffenden Salz gebracht wurden, um die stattfindende 

 Deplasmolyse zu beobachten. Eine Erstarrung des Protoplasmas wurde jedoch 

 bei meinem Objekt nie wahrgenommen. 



Alle Konzentrationen sind in Grammolekül pro Liter Lösung angegeben. 

 Die Konzentrationsdifferenzen zwischen den einzelnen Lösungen betrugen 0,005 

 bis 0,008 G.-M. Rohrzucker bzw. Harnstoff. Um die Art der Berechnung klar 

 zu machen, diene folgendes Beispiel. Ich fand in 



0,168 



0,160 



0,152 



0,144 



GM Zucker + 0,01 GM AICI3 



alle 



3/ 4/ 



V4 



keine 



Zellen plasmolysiert 



und in 











0,200 



0,192 



0,184 



0,176 



GM Zucker 



aUe 



74-V5 



V3 



fast keine 



Zellen plasmolysiert. 



0,16 GM Zucker + 0,01 GM AICI3 entspricht also 0,192 GM Zucker, d. h. 0,01 

 GMAICI3 entspricht 0,032 GM Zucker. Hiera:us berechnet sich der osmotische 

 Koeffizient des Aluminiumchlorids zu 3,2. 



Sorgfältige Herstellung der Lösungen vorausgesetzt, wird die Ungenauigkeit 

 der Messungen hauptsächlich durch die Fehler bei der Schätzung der Plasmolyse 

 bzw. durch die Unterschiede in der Plasmolysierbarkeit verschiedener Schnitte 

 bedingt. Ich schätze die möglichen Fehler bei den hier mitgeteilten Versuchen 

 diu-chschnittlich zu höchstens + 0,005 GM. 



Die Reinheit des verwendeten Rohrzuekerpräparats wurde durch Messung 



^) Für die bereitwillige Übersendung von Rhoeo - Pflanzen bin ich Herrn 

 Prof. Dr. Fitting zu großem Dank verpflichtet und ebenso dem Vorsteher des 

 Botanischen Gartens zu Kiel, Herrn Geh. Rat Prof. Dr. Reinke für die Erlaubnis, 

 die Versuchspflanzeri' im Botanischen Garten kultivieren zu lassen. 



2) Szücs, Jahrb. f. wissensch. Botanik 53, 269. 1913. 



