SÉANCE DU 24 OCTOBRE 331 



Action du méningocoque et des bactéries similaires 

 sur les milieux sucrés au neutralrotii, 



par Cu. Dopter et Raymond Koch. 



Pour 'différencier le micrococcus du micrococcus catarrhalis, 

 Briickner a employé le bouillon-ascite dexlrosé et maltosé à 1 p. 100, 

 additionné de neutralroth. Le méningocoque (2 races employées; ense- 

 mencé en milieu maltosé donnait au deuxième jour une coloration 

 rouge cerise fluorescente, devenant bientôt rubis foncé; en milieu 

 dextrose, la coloration devenait jaune canari avec fluorescence verte. 

 Une autre race donnait la même réaction sur le maltosé, mais cinq 

 jours après; sur dextrose, la coloration devenait rouge cerise, à peine 

 fluorescente. Le catarrhalis ne provoquait sur ces milieux aucune dif- 

 férence de teinte. 



Nous avons répété ces expériences en utilisant neuf échantillons de 

 méningocoques authentiques et quelques pseudo-méningocoques. Nos 

 résultats diffèrent sensiblement de ceux de Briickner : 



Pour tous les échantillons de méningocoques provenant d'Allemagne 

 ou de France, ce n'est qu'au bout de cinq à six jours que des différences 

 de coloration de nos milieux sont apparues; d'autre part, sur le glu- 

 cose et le maltosé, la coloration est devenue grenadine, puis cerise, 

 puis rubis, accompagnée d'une fluorescence des plus nettes. Sur les 

 autres sucres, la réaction était nulle. Avec les flavus I, II, les milieux 

 lévuloses, dextroses, maltosés ont pris dès le lendemain une coloration 

 rubis, devenue lie-de-vin les jours suivants. Le catarrhalis n'a produit 

 aucune réaction, et les milieux ont gardé leur teinte originelle. 



En raison de la lenteur que mettent ces réactions à se produire avec 

 le méningocoque (ce qui retarderait beaucoup une différenciation 

 urgente), nous avons pensé qu'on pourrait de préférence utiliser les 

 milieux solides et nous avons préparé de la gélose-ascite sucrée au 

 neutralroth dans les conditions suivantes : 



A 73 centimètres cubes de gélose à 3 p. 100, très légèrement alcaline, 

 on ajoute 1 gramme de lévulose, dextrose, maltosé, etc. Après stérili- 

 sation à l'autoclave, on additionne ce milieu de 25 centimètres cubes de 

 liquide d'ascite et de 1 centimètre cube d'une solution stérile de neu- 

 tralroth à 1 p. 100. Le milieu prend une teinte orangée. On le maintient 

 au bain-marie à 60 degrés pendant une heure environ, jusqu'à la for- 

 mation d'un fin précipité (1) de neutralroth. On agite les récipients et 



(1) Il est indispensable d'obtenir ce précipité qui contribue à décolorer 

 notablement le milieu. Si on le coule immédiatement avant cette précipi- 

 tation, la teinte est trop foncée et la réaction colorante due à la fermenta- 

 tion des germes étudiés n'est pas suffisamment nette. 



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