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faible persislanl; noter cette quantité deNaOHN/10; ce verre est le 

 verre témoin du type de coloration à obtenir. 



Dans un autre verre, introduire la quantité de sel ammoniacal neu- 

 tralisé n'excédant pas 0,0 W d'AzH'' ; verser 10 centimètres cubes du 

 mélange alcoolique d'aldéhyde, ajouter 50 centimètres cubes IPO, 

 VI gouttes de phénolphtaléine et introduire la quantité de NaO H N/10 

 nécessaire à l'apparition de la teinte rose faible persistant, soit a centi- 

 mètres cubes, retrancher le nombre de centimètres cubes nécessaires à 

 la neutralisation de l'aldéhyde (verre témoin); l'ÂzH^ de la prise d'essai 

 sera donné par : 



a centimètres cubes — correction X 0,0018. 



L'aldéhyde acétique a, sur l'aldéhyde formique, le précieux avantage 

 de dissoudre la phénolphtaléine et d'être employé à dose faible : 5 cen- 

 timètres cubes CH^ _ CO - H (1). 



Conclusions : il ressort de nos essais que l'aldéhyde forme un aldé- 

 hydate d'ammoniaque et que la réaction est directe et simple. 



La sporulation aérobie des vibrion septique, bacille d'Aghalme et 

 bacille du tétanos crée des races nouvelles aérobies de ces germes (2) : 



aérovibrion ET AÉROBACILLES, 



par Georges Rosbntiial, 



Contrairement à l'anaérobie de reconstitution qui fait retour àl'anaéro- 

 biose, la sporulation aérobie fixe les caractères acquis dans la vie au 

 contact de l'air, et, en les fixant au degré obtenu, crée de nouvelles 

 races de germes. Il ne s'agit plus de races neutralisées, que nous avons 

 dénommées bacillogènes, mais de races aérobies gardant les propriétés 

 biologiques du germe anaérobie : ce sont alors les aérovibrion, aéro- 

 bacille d'Achalme, aérobacille du tétanos. 



Nous allons justifier cette proposition. Mais d'abord, pour que l'expé- 

 rience soit concluante, il importe de n'utiliser la culture de sporulation 

 aérobie que lorsque les bacilles aérobisés y seront morts après sporula- 

 tion. Sinon, on ferait simplement un repiquage de culture adaptée. 



(1) b centimèlres cubes de CH^ — CO — H pur (10 centimètres cubes du 

 mélange aldéhydo-alcoolique) pour chaque 0,010 d'AzH* existante, alors que 

 avec CH — — H il faut une quantité double d'aldéhyde. — On peut diluer 

 CH — — H avec un mélange, à parties égales, d'alcool et d'eau ; ce mélange 

 solubilisant la phénolphtaléine rend les titrations plus sensibles. 



(2) Voir Société de Biologie, nov. 1902 et 1903, mai 1906 à juin 1907. 



