SÉANCE DU 30 JANVIER 183' 



Technique. — La technique qui nous paraît la plus rigoureuse est la 

 suivante ; les pièces fixées vingt-quatre ou quarante-huit heures dans 

 l'alcool à 95 degrés sont portées directement dans une solution de 

 tannin à 10 p. 100 pendant une demi-heure à une heure suivant l'épais- 

 seur des coupes. Â la sortie du tannin, on fait un court lavage à Teait- 

 distillée et les pièces sont plongées dix minutes dans du bichromate de 

 potasse à 2 p. 100. Après ces deux temps, les pièces tannées peuvent 

 être impunément lavées, incluses et coupées sans que le glycogène 

 risque de se dissoudre. Les préparations seront colorées à la safranine 

 anilinée une heure, puis fortement différenciées à l'alcool et montées 

 au baume sous lamelles. 



Le glycogène apparaît coloré en rouge vif, le noyau est rosé ou jaune 

 et la charpente cytoplasmique jaune clair. 



Il s'agit bien de glycogène. Les préparations faites d'une façon com- 

 parative à la gomme iodée, les coupes ayant subi le lavage à l'eau avant 

 le tannage bichromate, démontrent que cette substance colorée en rouge 

 vif par la safranine est soluble dans l'eau et qu'elle n'existe que dans 

 les cellules hépatiques qui contiennent du glycogène. Nous sommes en 

 mesure d'affirmer que cette réaction est caractéristique, car elle appa- 

 raît avec la même régularité que la réaction rouge à l'iode. 



Inconvénients. — Deux inconvénients signalent cette réaction histo- 

 chimique : le durcissement considérable des pièces, et surtout la super- 

 ficialité du tannage. Le tannage, même sur ces coupes fines, se borne le 

 plus souvent aux couches périphériques des pièces. La coagulation du 

 glycogène ne s'étend pas à toute l'épaisseur des coupes. Ce dernier fait 

 QSt compensé cependant par un avantage : la faculté de comparer les 

 cellules périphériques qui contiennent leur glycogène avec les cellules 

 centrales dont le glycogène n'ayant pas été tanné a été dissous par le:: 

 lavages aqueux. 



Avanlages. — Cette technique nous paraît préférable à la réaction 

 iodée (1). Les pièces sont plus facilement lavées, coupées et montées. 

 Déplus, les coupes portent sur des pièces dont le glycogène, solidifié 

 pour ainsi dire, présente plus de cohésion au rasoir du microtome ; 

 aussi certains artifices de préparations nous ont paru beaucoup plus 

 rares qu'avec l'autre méthode. Un de ces artifices est la localisation du 

 glycogène à un des pôles de la cellule, tandis que l'autre côté paraît 

 vide de toute substance. Cette disposition du glycogène est signalée par 

 la généralité des auteurs qui se sont occupés de la question. Nous 

 l'avons retrouvée dans certaines coupes, mais seulement dans les cou- 

 ches moyennes des zones tannées. 11 nous semble que cette répartition 



11) Néanmoins nous continuons à utiliser ces deux techniques d'une façon 

 comparative : la gomme iodée permet d'étudier la répartition du glycogène 

 intralobulaire, et le tannage, la répartition intracellulaire. 



