888 RÉUNION BIOLOGIQUE DE MARSEILLE 



Nos recherches ont été faites avec le Rhizopus nigrlcans Ekr. (Mucor stolo- 

 nifer), que nous avons cultivé en cellule, en partant de spores obtenues sur 

 brioche. Ces spores, sur nos lamelles de culture, sont ensemencées sur jus 

 d'orange, et nous indiquons ce détail car il a son importance. Au moment 

 où le fîlam :;nt commence à pointer, le protoplasma hyalin et d'apparence 

 homogène occupe toute la cavité mycélienne, et ceci est vrai aussi bien 

 pour les cultures exposées à la lumière que pour celles qui sont maintenues 

 à l'obscurité. 



Mais comparons maintenant ce qui se passe, d'une part, dans les cultures 

 qui, placées dès le début à la lumière, resteront éclairées, et, d'autre part, 

 dans les cultures que de l'obscurité nous apporterons brusquement . à la 

 lumière, 



Dans les premières, le protoplasma à l'intérieur du mycélium ne présente 

 aucun mouvement et reste normalement turgescent. 



Dans les secondes, une modification brusque est observée dès qu'elles pas- 

 sent à la lumière, c'est-à-dire, par exemple, lorsqu'on les place par un temps 

 clair devant une fenêtre. 



Les tubes germinatifs de ces spores étaient simples et avaient en 

 moyenne au moment où on les a retirés de l'obscurité de .30 à 40 ;j. de lon- 

 gueur. 



Immédiatement, sous l'influence de l'éclairement, l'extrémité de chaque 

 filament perd sa turgescence et se ride, en même temps que le protoplasma 

 rétrograde vers la spore dans laquelle il vient tout entier s'accumuler. Tout 

 le filament ridé et transparent nest plus maintenant visible que grâce aux 

 plissements de sa membrane aplatie. 



Nous faisons alors deux lots des échantillons qui ont subi cette contraction 

 brusque. 



Les spores du premier lot sont laissées à la lumière; et ici deux cas : 



Ou le protoplasma, très contracté dans la spore, ne revient plus vers le tube 

 germinatif. Evidemment il est tué; beaucoup d'observateurs ont avant nous 

 constaté, dans des conditions plus ou moins analogues, un fait semblable, et 

 l'ont toujours ainsi expliqué. 



Ou le protoplasma se dirige de nouveau vers le filament. Mais ce mouve- 

 ment s'effectue avec une certaine lenteur. Dans le second lot, au contraire, 

 c'est le même afflux du protoplasma vers le tube, mais avec une rapidité 

 beaucoup plus grande. 



Ce qu'il est curieux en tout cas d'observer, aussi bien dans ces derniers 

 tubes que dans ceux du premier lot, c'est que les plissements qui se sont 

 produits sur les membranes après le retour du protoplasme sont définitifs 

 et ne disparaîtront pas lorsque le tube germinatif sera de nouveau rempli. 

 On peut ainsi très facilement reconnaître dans la suite la partie du filament 

 mycélien qui s'était momentanément ridée et la distinguer de la partie qui 

 s'est nouvellement formée après le retour du protoplasma. 



Tout ce qui précède se rapporte donc aux cultures qui ont passé de l'obs- 

 curité à la lumière; mais, examinons maintenant les phénomènes que pré- 

 sentent les cultures transportées d'un milieu éclairé dans un milieu qui ne 

 l'est pas. Ici, au bout de quelques minutes, tous les jeunes tubes germinatifs 

 se sont dilatés en ampoules, par suite évidemment d'une poussée exagérée 



