SÉANCE DU 16 AVRIL 649 



à celles que nous avons décrites plus haut. La chronaxie n'a subi 

 aucune modification même après immersion de la préparation 

 pendant i heure 20 dans une solution à 10 gr. p. i.ooo. 



(Laboratoire de physiologie de la Sorbonne,) 



Coloration trichromique pour la technique histologique, 

 par H. Sloboziano. 



A côté de l'hématéine-éosine et des méthodes plus compliquées 

 qui demandent du temps et du doigté, il est nécessaire d'avoir 

 des techniques faciles, qui, en mettant en évidence les éléments 

 histologiques, nous permettent la lecture facile et complète des 

 <;oupes. 



Nous sommes partis de la technique de P. Masson, que nous 

 avons modifiée et simplifiée. Sans vouloir critiquer les autres 

 procédés, nous voulons donner une méthode qui pourra rendre 

 quelques services. 



1° Il faut colorer les noyaux par le Glychamalaun de Meyer 

 pendant 5 à 10 minutes. Lavage à l'eau ordinaire. 2° Mettre la 

 lame dans la solution d'alun de fer à i 0/0 dans l'eau distillée. 

 Laisser environ i à 2 minutes, car la chromatine aura l'occasion 

 de se différencier encore une fois dans le temps 6. Laver quelques 

 minutes à l'eau. 3° Colorer le protoplasme dans une solution 

 aqueuse d'aurantia à i ou 2 0/0, ou encore mieux d'orange, 

 solution à i 0/0 dans l'eau distillée. Laisser la lame dans l'un 

 de ces colorants 5 à 10 minutes. Rincer dans l'eau distillée. 

 4° Mettre pendant 3 à 5 minutes dans une solution d'acide phos- 

 pho-molybdique à i p. 100 dans l'eau distillée. Laver. 5° Colorer la 

 substance coUagène dans le mélange : a) bleu d'aniline (Poirrier 

 n° 2 ou Griibler) o,5o gr. pour 5o c-c. d'eau distillée ; b) acide 

 phospho-molybdique, o gr. 5o pour 5o ce. d'eau distillée. 



Ces solutions sont mélangées à parties égales. La lame est 

 €olorée après 10 à 20 minutes ; on la passe à l'eau distillée. 

 •6° Différencier dans la solution : alcool à 76°, 100 cent, cubes ; 

 acide chlorhydrique, V gouttes. Laisser la lame de 2 à 5 minutes 

 dans cet alcool chlorhydrique faible. Pendant ce temps, la prépa- 

 ration de bleu redevient jaune rouge, le bleu restant seulement 

 sur le cOllagène. 



Une faute facile à éviter est de ne pas avoir assez différencié 

 après le bleu. Le tissu conjonctif, surtout sur les coupes épaisses, 

 reste empâté par le bleu. 



Si le bleu n'a pas assez coloré le collagène, on recommence 



