SÉANCE DU 11 DÉCEMBRE 'ïo'i-1 



suivie pour nos recherches. Pour letucle de la ly&e in vivo, j'ai uti- 

 lisé la cellule de Van Tieghem ; inutile de dire que les plus grandes 

 précautions étaient prises pour éviter la présence d'un germe étran- 

 ger. Après avoir ajouté une anse de platine de 3 mm. de liquide 

 actif à une faible émulsion de Shiga je prélevais une gouttelette du 

 mélange que j'étalais sur une lamelle stérile qui était aussitôt mise 

 en place sur une cellule de Van Tieghem. 



Pour suivre l'évolution du microorganisme, il faut : un objectif 

 puissant et à long foyer, un très fort éclairage, supprimer le conden- 

 sateur et diaphragmer fortement. En procédant ainsi, on peut cons- 

 tater dès le début de l'observation, à côté des bacilles de Shiga très 

 nombreux, un certain nombre de petits corpuscules ronds ou légère- 

 ment allongés et qu'on remarque assez facilement à cause de leur 

 réfringence particulière. Ces corpuscules très souvent au contact 

 direct d'une bactérie germent et mettent en liberté de petites masses 

 protoplasmiques qui restent pendant un temps plus ou moins "long 

 attachée à la bactérie. Une fois libres, ces masses protoplasmiques, 

 grossissent, présentent une vacuole centrale, rarement deux, émettant 

 des pseudopodes et se déplacent très lentement par des mouvements 

 de reptation. Il est alors facile de se rendre compte qu'on a affaire 

 à des véritables myxamibes. Pour mettre en valeur le mouvement 

 des myxamibes, il faut faire un nouveau prélèvement et aménager 

 une nouvelle cellule de Van Tieghem vers la troisième on quatrième 

 heure, après le début de l'expérience et l'observer sahs retard, car à 

 cause de l'extrême minceur de la couche liquide que nécessite la mise 

 au point, les myxamibes se collent facilement à la lamelle par la sen- 

 sibilité au contact et restent immobiles. L'oculaire micrométrique 

 nous a permis de constater qu'il faut à un myxamibe placé dans les 

 conditions favorables à l'observation de 30 à 40 minutes pour par- 

 courir un espace de 4 à 6 micromillimètres. Plus tard, vers la sixième 

 heure, lorsque la plupart des bactéries ont été dissoutes ou englo- 

 bées, et que le milieu commence à être épuisé, les myxamibes pré- 

 sentent des vacuoles plus nombreuses, se rapprochent, se soudent 

 entre elles, émettent des filaments et édifient des- fructifications. 

 Pour les préparations colorées, j'ai avec avantage procédé de la 

 façon suivante : à différents moments au cours de la lyse, je fais des 

 prélèvements du mélange dont je dépose une goutte sur plusieurs 

 lames stériles que je place immédiatement en chambre humide sous 

 une cloche de Radais stérilisée. Pour l'étude des premières phases 

 du phénomène, on peut laisser les lames en chambre humide une 

 demi-heure ou une heure ; mais, plus tard, pour les prélèvements 

 qui doivent servir à l'étude des fructifications, les lames doivent 

 rester en chambre humide plus longtemps. Ce sont les prélè- 



