470 RÉUNION BIOLOGIQUE DE BUCAREST 



Leur réaction colorante est fortement basophile (1). Ailleurs, les tours 

 de spire sont plus ou moins étirés et alors les parasomes ressemblent à 

 des grains d'amidon ou à des figures en cornets, droits ou courbés. On 

 rencontre aussi des « bandelettes » provenant des parasomes com- 

 posés. 



A côté de ces images, on rencontre aussi des « calottes chromo- 

 philes », coiffant la face du noyau qui est tournée vers l'ovocyte. Sur le 

 matériel bien fixé et coloré, les calottes se résolvent en filaments de lon- 

 gueurs inégales, à contours sinueux, et qui s'enchevêtrent entre eux 

 d'une façon inextricable. Les extrémités des filaments sont plus ou 

 moins rapprochées et appliquées sur la membrane nucléaire, tandis que 

 leurs milieux s'en éloignent. L'ensemble forme une coiffe typique au 

 noyau. 



Ces diverses formations existent simultanément à l'intérieur d'une 

 même cellule folliculeuse et sont très nombreuses à la fin de la vitello- 

 genèse et au début de la choriogenèse. 



A mesure que ce processus évolue, on constate une régression des 

 parasomes. Les calottes disparaissent, les parasomes enroulés devien- 

 nent de plus en plus rares, plus pauvres en filaments, plus petits et 

 moins avides pour les colorants. En même temps, d'autres formations 

 apparaissent dans le cytoplasme : ce sont des sortes de bâtonnets, 

 courts, aux extrémités tronquées ou effilées, aux contours droits ou 

 flexueux. Tls sont dispersés dans tout le corps cellulaire, mais ils sont 

 plus nombreux dans le voisinage immédiat du noyau. 



Bientôt enfin, les bâtonnets disparaissent, le cytoplasme devient clair, 

 homogène et très acidophile. A ce moment, le chorion est complètement 

 constitué. 



(Ij Les ovaires doivent être fixés de préférence dans des liquides contenant 

 du sublimé (sublimé acétique de Lang, Lenliossek platiné, Gilson nitrique, 

 Scliaudinn, etc.). — Les meilleurs résultats ont été obtenus par la coloration 

 au bleu de toluidine fixé par l'acide picrique. Les sections sont colorées 

 pendant trois à quatre minutes à la flamme, avec une solution de bleu de 

 toluidine 1 p. 100. On laisse refroidir cinq à dix minutes, puis, après lavage 

 rapide à l'eau, on introduit les lames pendant dix minutes dans l'acide 

 picrique dilué (1 ce. acide picrique alcool, sat. pour 100 ce. d'eau dist.); le 

 colorant se fixe électiveraent et trèsénergiquement sur les parasomes, tandis 

 que le reste de la préparation devient presque incolore à la suite de la forma- 

 tion d'un picrate de bleu de toluidine insoluble, qui tombe au fond du vase. 

 On différencie à limite dans l'alcool à 70 degrés et on lave jusqu'à la disparition 

 complète de l'acide picrique. On colore à l'éosine, fuchsine ou mieux avec 

 l'orange G sol. aq. sat., et on monte au baume. Dans les pièces ainsi traitées, 

 les parasomes seuls sont colorés en violet intense, tandis que le reste de la 

 cellule prend la couleur acide. Si cette dernière a été l'orange, le tableau est 

 particulièrement net et instructif. 



