462 RÉUNION BIOLOGIQUE DE LILLE 



en 1909 ces vue?, et appliqua le premier la réaction de l'indophénol à l'étude 

 histologique des tissus. Il parvint à colorer en coupes, par congélation, les 

 éléments spéciaux auxquels paraît appartenir le pouvoir oxydant qui conjugue 

 le naphtol et la diamine. Ce sont les granulations des leucocytes. Il put 

 démontrer que, dans un mélange alcalin d'à naphtol et de chlorhydrate de 

 diméthylparaphenylènediamine, tous les leucocytes de- la famille des poly- 

 nucléaires se montrent bourrés de fines granulations qui prennent, d'une 

 manière intense, la coloration bleue de l'indophénol. 



Enfin, Strassmann a pu, par fixation au formol salin, réaliser la réaction 

 de Schultze sur des coupes à la paraffine. 



L'indonaphtol étant tout à fait insoluble dans l'eau, et ne possédant 

 en solutions alcooliques fortes ou diluées aucun pouvoir colorant 

 spécifique pour les grains leucocytaires, on admet généralement que 

 la production d'une matière colorante dans les granulations du proto- 

 plasme ne peut s'expliquer que par la présence d'une oxydase qui, par 

 transport d'oxygène, réaliserait sur place la synthèse de l'indophénol. 

 D'où la dénomination de réaction oxydasique des leucocytes. Cette 

 réaction, si intéressante, n'avait jusqu'ici trouvé aucune application 

 pratique en hématologie. C'est que pour la produire, suivant la technique 

 de Schultze, il fallait employer des solutions de naphtol a très alcalines, 

 d'une alcalinité telle que le sang étalé en lames ou lamelles se décol- 

 lait toujours, malgré les fixations les plus énergiques. De plus, personne 

 jusqu'ici n'avait trouvé le moyen de conserver la coloration bleue des 

 grains leucocytaires, c'est-à-dire la possibilité de faire des préparations 

 durables, propres à l'étude. 



Nous nous sommes proposé de remédier à cette lacune de la technique 

 hématologique, et nous sommes parvenus, par le procédé que nous 

 allons indiquer, à des résultats assez satisfaisants. La méthode employée 

 est la suivante : 



1° Avoir des lamelles de sang bien étalées; fixer dans une solution de 

 sublimé, dans l'eau distillée à 30 p. 1.000 pendant quatre minutes; 

 laver à l'eau distillée plusieurs fois; 



2° Placer la lamelle, face en bas, dans un mélange de : 



Eau d'aniline 9 ce. 



Solution aqueuse de fuchsine saturée . . 1 ce. 



Laisser de deux à trois minutes; suivre la coloration des noyaux, et 

 arrêter avant que le rouge ne colore les hématies. Laver complètement à 

 l'eau distillée. Il faut que les hématies soient complètement décolorées, 

 ou n'aient qu'une très légère teinte rose ; 



3° Colorer les hématies en plaçant la lamelle trente secondes dans 

 une solution à Ip. 100 de jaui^e Victoria. Filtrer lasolulion seulement au 

 moment de s'en servir. Laver à l'eau pendant quinze à trente secondes, 

 en changeant l'eau; 



