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2. Lokalisierter HCN-Nachweis. 



Weitaus schwieriger gestaltet sich der lokalisierte Nachweis- 

 von Blausäure im pflanzlichen Gewebe. 



Für die sogenannte »locker gebundene« HCN sind bereits 

 zwei diesem Zwecke entsprechende Methoden bekannt: die von 

 Treub 1 eingeführte Beiiinerblaureaktion im Verein mit dem 

 Bürstenverfahren und Peche's 2 Nachweis mit Mercuronitrat. 3 



Von der Berlinerblaureaktion sagt Treub 4 selbst: »Es ist, 

 a priori, wahrscheinlich, daß der Niederschlag von Berlinerblau, 

 der sich in den Blättern bei dem angegebenen Verfahren bildet, 

 von dem »quasifreien« HCN herrührt und nicht von der glykosidi- 

 schen Verbindung (Phaseolunatin). Die folgende Erfahrung zeigt, 

 daß es so ist,....« Diese Ansicht entspringt aus der Überlegung, 

 daß durch das Eintauchen der Blätter oder Schnitte in die alko- 

 holische Kalilauge (erster Teil der Reaktion) jede weitere fermen- 

 tative Spaltung eventuell vorhandener HCN-Glukoside unterbrochen 

 und gelähmt werden muß. Aus diesem Grunde wird die Berlinerblau- 

 methode bei allen jenen Objekten versagen, die Glukosid und 

 Ferment räumlich getrennt enthalten, 5 wie z. B. bei trockenen, 

 dünnen Schnitten von der bitteren Mandel, von Phaseolus lunatus 

 (Bohnensame) oder bei Blättern von Sambucus nigra etc. 



Tatsächlich ist die Lokalisation bei der Berlinerblaumethode,, 

 wie schon Peche betonte, nur eine bedingte und nur bei den stark 

 HCN-haltigen Tropenpflanzen (Pangium edule, Phaseolus lunatus, 

 Araceen) stets befriedigend, besitzt jedoch den Vorteil vollkommener 

 Eindeutigkeit. — Schon bei Prunus laurocerasus, einer der an 

 Blausäure reichsten Pflanzen der Heimat, sah sich Peche zur 

 Erprobung einer feineren Methode gezwungen; mit dem Mercuro- 

 nitratreagens erzielte er auch an diesem Objekt sehr günstige 

 Ergebnisse. Wird zur Ergänzung mit demselben Material eine der 

 früher angegebenen qualitativen Mikroreaktionen durchgeführt, so 

 ist auch die Herkunft des reduzierten, metallischen Quecksilbers 

 eindeutig sichergestellt. — Dort, wo keine »lockere« HCN-Bindung 

 vorliegt, z. B. bei Arum maciüatuni, versagt aber auch diese 

 Methode, was bereits Peche anscheinend erkannte. 



Die für den qualitativen Blausäurenachweis so empfindlichen 

 Reaktionen mit Silbernitrat und Benzidin-Kupferacetat kommen 



i M. Treub, 1. c. (1895), p. 1 — 12. 



2 K. Peche, 1. c, p. 4 — 5 (des Separat.). 



3 Betreffs der Art der Durchführung beider Reaktionen vgl. neben den Ori- 

 ginalarbeiten auch: H. Molisch, Mikrochemie der Pflanze, 2. Aufl. (1921), p. 191 

 bis 193; O. Tunmann, Pflanzenmikrochemie, 1913, p. 358 — 359. 



4 M. Treub, 1. c, 1905 {Phaseolus lunatus), p. 94. 



5 Die »lockere« HCN-Bindung kann man hingegen, wie bereits angedeutet, 

 als eine topographische Koexistenz von Blausäureglukosid und wirksamem Enzym 

 auffassen (vgl. p. 6). 



