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die Verholzung und Verdickung der Zellvvände von den äußeren Schichten nach 

 dem Inneren der Samenschale vor. Die Zellen des Endocarps führen nur so lange 

 Kern und Plasma, als der Samen in Bildung begriffen ist. Geht dieser seiner Voll- 

 endung entgegen, sterben die Sclereiden der Samenschale ab. Bei Färbung mit Hämato- 

 xylin in Phenol färbt sich der Kern lichtblau, der Nucleolus schwärzlich. Plasmolyse 

 gelang bei diesem Objekt nur in den jüngeren Stadien der Steinzellen. Am längsten 

 erhalten bleiben auch hier Zellpartien in der Umgebung der Chalaza. Dort finden 

 sich noch bei zwei Monate alten Früchten Zellen, die einen vollkommen intakten 

 Kern mit klar hervortretendem Nucleolus enthalten. 



Araceae. Scindapsus pictus. Blatt. 



Verdickung der Membran erfolgt hier bei faserartigen Zellen im Blatt. Sehr 

 häufig anastomosieren diese untereinander und nehmen dadurch eine H-förmige 

 Gestalt an. In Stamm und Luftwurzel von Scindapsus fanden sich keine scleroti- 

 sierten Idioblasten. 



Die Fasern erreichen eine Länge von mehreren Millimetern; die Verdickung 

 ihrer Zellwände geht so weit, daß das Lumen stellenweise nur auf einen zarten 

 Kanal reduziert, oder sogar vollkommen geschlossen wird. Wenn das Lumen der 

 Zellen auf längere Strecken in normaler Weise erhalten bleibt, bilden sich sehr feine 

 Querwände aus, durch die die Faser in mehrere Teilzellen zerlegt wird. Diese Teil- 

 zellen enthalten meist jede einen Kern von normaler Größe. Analoge Vorgänge 

 wurden von Haberlandt 1 bei Begonia rex konstatiert und auf Regeneration der 

 Zellen zurückgeführt. Auch bei Scindapsus ist die sekundäre Zellteilung nur auf 

 ältere Fasern beschränkt. Die Bildung der Sclereiden setzt im mittleren und untersten 

 Teil der Blattspreite ein. Hier trifft man daher auf die meisten Fasern, welche Zell- 

 teilung zeigen. In den Sclereiden ließ sich fast durchwegs ein Plasmahäutchen fest- 

 stellen; bei den jüngeren Fasern wurde die Plasmolyse mit 20°/ Kaliumnitrat, in 

 den älteren Sclereiden mit konzentriertem Glyzerin vorgenommen. Der Kern ist oval 

 und enthält einen auffallend lichtbrechenden und großen Nucleolus. Durch Zusatz 

 von Neutralrot ließ sich der Kern bei gleichzeitiger Plasmolyse gut färben. Bei 

 fixiertem Material erfolgte die Kernfärbung mit Hämatoxylin. 



Monstera deliciosa (Philodendron). Luftwurzel. 



In der primären Rinde der Luftwurzel von Monstera deliciosa treten zahllose, 

 faserförmige Idioblasten auf. Diese zeigen einen eigentümlichen, etwa in der Mediane 

 der Zelle entspringenden, schlauchartigen Fortsatz, der sich zwischen die benach- 

 barten Zellen einschiebt und auf diese Weise die Faser im Parenchym verankert. 

 Es läge auch die Vermutung nahe, daß diese Zellfortsätze ebenso, wie bei Scindapsus, 

 den Zweck haben, eine Verbindung zwischen zwei Sclereiden herzustellen ; doch 

 wurden derartige H-förmige Zellen hier nicht gefunden. Die Entwicklung der Sclere- 

 iden beobachtete ich von der Wurzelspitze aufwärts; sie sind auf parenehymatische 

 Zellen zurückzuführen, deren Querwände wie bei jungen Bastzellen dachförmig 

 abgeschrägt sind. Später schieben sie sich durch gleitendes Wachstum zwischen 

 die angrenzenden Parenchymzellen ein. In diesen jungen Zellen sind die Kerne leicht 

 ohne Färbung zu beobachten. Die stark verdickten Fasern enthalten aber in den 

 meisten Fällen nur mehr körnige Plasmamassen. Da die Sclereiden bereits in sehr 

 jungen, etwa drei Wochen alten Teilen der Wurzel ihre vollkommene Ausbildung 

 erfahren, ließen sich nur in noch geringem Abstand von der Wurzelspitze Zellkerne 

 in den Fasern feststellen ; sie sind ebenso, wie die Kerne des Parenchyms, linsen- 

 förmig und enthalten einen sehr großen, stark lichtbrechenden Nucleolus. Mit 

 Hämatoxylin fingierten sich in älteren .Sclereiden auch Zerfallsprodukte in Auflösung 

 begriffener Kerne. Plasmolyse wurde mit 20 / Kaliumnitrat und 50 'q Kalilauge 

 versucht; meine Bemühungen in dieser Richtung blieben aber auch bei noch fast 

 unverdickten Fasern ergebnislos. 



i Haberlandt, G., 1. c, p. 44. 



