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Im einzelnen ist für die Orceïnfarbung und die Trypsinverdauung 

 noch folgendes zu bemerken: 



1. Zur Orceinfärhung sind notwendig zwei Lösungen: 



Lösung L 



Orcein (von Grübler) 1,0 



Acid. hydrocMor 1,0 ccm 



Alkohol 99,8 «/o 100,0 



Lösung II. 



Alkohol 70 7o 100,0 



i^cid. hydrochlor 1,0 



Diese zweite Lösung ist, wie man sieht, der gewöhnliche, in jedem 

 histologischen Laboratorium vorrätige, zum Differenzieren überfärbter 

 Schnitte gebrauchte salzsäurehaltige Alkohol. Lösung I hält sich, 

 ohne an Wirksamkeit einzubüssen, ungefähr ein Jahr. 



Zum Gebrauche mischt man von Lösung I 4 Teile, zur Lösung II 

 1 Teil und lässt die zu färbenden Schnitte, seien es nun Celloidin- 

 Schnitte oder aufgeklebte, von Paraffin befreite Paraffin-Schnitte, in der 

 Mischung 24 Stunden. Danach spült man die Schnitte mit salzsäure- 

 haltigem Alkohol ab, um den üeberschuss der îarbe von ihnen zu 

 entfernen und betrachtet unter dem Mikroskop den Ausfall der Fär- 

 bung. Das eine Mal findet man ausschliesslich elastische Fasern ge- 

 färbt und auch diese vielleicht nur in einem blassen Farbenton. Ist 

 dies der Fall, so setzt man zu der Lösung, welche 4 Teile Lösung I, 

 1 Teil Lösung II enthielt, noch 1 — 2 Teüe der Lösung I und lässt 

 die Schnitte in dieser Flüssigkeit, in welcher das gegenseitige Ver- 

 hältnis des Orceins zur Salzsäure sich um ein Geringes zu Gunsten 

 des Orceins verschoben hat, nochmals 24 Stunden. Ist auch jetzt die 

 Färbung der elastischen Fasern noch zu schwach, was wohl kaum 

 vorkommen dürfte, so kann man noch weiter Lösung I hinzusetzen 

 und weiter färben, bis das gewünschte Resultat erzielt ist. 



Betrifft aber im andern Falle die Färbung ausser dem elastischen 

 Gewebe auch noch das Protoplasma und das collagene bezw. reticu- 

 läre Gewebe, so muss man, um eine ausschliessliche Färbung des 



