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la tête et le premier segment thoracique et on laisse s'opérer la 

 fixation pendant plusieurs heures. 



Il est bon de n'employer que des individus qu'on aura laissés 

 quelques jours sans nourriture, sans quoi l'intestin est rempli de 

 matières alimentaires et l'injection réussit difficilement. 



Les réactifs fixateurs qui suivent sont excellents dans l'étude 

 microscopique des insectes et, parmi eux, ce sont les mélanges picri- 

 ques (formules de Mayer) (') et l'alcool acétique qui nous ont donné 

 les meilleurs résultats. Les premiers ont, en outre, la propriété de 

 ramollir quelque peu la chitine, ce qui facilite les coupes. 



A. Mélanges picriques. On y laisse séjourner les objets pen- 

 dant plusieurs heures, selon leur volume. On lave bien et longtemps 

 à l'alcool à 70°, jusqu'à ce que l'alcool ne se colore plus en jaune. 

 On durcit à l'alcool, etc. 



1. Acide picrosulfiirique de Kleinenherg, modifié par Mayer (^). 



Acide sulfurique concentré, 2 parties; 



Eau distillée, 100 parties; 



Acide picrique, autant qu'il s'en dissoudra. 



2. Acide picronitrique de Mayer, Très bonne formule. 



Acide nitrique, 5 parties; 

 Eau distillée, 400 parties; 

 Acide picrique, autant qu'il s'en dissoudra. 



3. Acide pierochlorhydrique de Mayer, 



Acide chlorhydrique, 8 parties ; 



Eau distillée^ 100 parties-; 



Acide picrique, autant qu'il s'en dissoudra. 



4. Alcool picrique de Gage (^). 



Alcool à 90°, 250 gr. ; 

 Eau distillée, 250 gr. ; 

 Acide picrique, 1 gr. 



B. Alcool acétique de Zacharias (^). 



Fixer pendant plusieurs heures dans le mélange suivant et laver 

 ensuite à l'alcool : 



Acide acétique, 1 partie ; 

 Alcool absolu, 4 parties; 

 Acide osmique, quelques gouttes. 



(1) Mltth. zool. Stat. Neapel., 1881. 



(2) Journ. Roy. Micr. Soc, 1882. 



(3) Proc. Am.Micr. Soc, 1890. — Journ. Roy. Micr. Soc, 1891. 



(4) Anat. Anz,, 1888. 



