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Vicia Faba). Indessen kamen Ausnahmen vor. So waren die Blätter 

 relativ phloroglucinärmer bei Betula alba, Pirus Äucuparia, Prunus 

 avium, reicher bei Cofea arabica; überhaupt keine Reaction ira grünen 

 Gewebe und der Epidermis — wohl aber in den Nerven — trat auf 

 bei Elaeagnus angmtifoUa und Galega ofßcinalis, ob dauernd, ist noch 

 zu untersuchen. 



Betreffs der specielleren Vertheilung des Phloroglucins im Palissaden- 

 und Schwammparenchym Hessen sich irgend welche allgemeineren 

 Gesichtspunkte nicht aufstellen, ersteres war häufig reicher daran und 

 zeigte Zelle für Zelle Rothfärbung mit Vanillin - Salzsäure (Cofea 

 arabica^ Corylus Avellana, Juglans regia, Tilia platyphyllos, T. tomentosa), 

 während meist nur ein Theil der Schwamm parenchymzellen reagirte; 

 aber auch dies war durchweg stark phloroglucinhaltig bei Camellia 

 japonica, Cydonia vulgaris, Platanus occidentalis , Spiraea latifolia, 

 Sp. trilobata, Viburnum Tinus. Bei Evonymus radicans enthielt es 

 recht ansehnliche Mengen dieses Körpers, während von den Palissaden 

 nur sehr vereinzelte die Reaction gaben. Es trat auch wohl die 

 Färbung jederseits in der äussersten Zellreihe des grünen Gewebes 

 kräftiger auf, eine Eigenschaft, die bei den centrischen Blättern nichts 

 Auffallendes bot, bei den bifacial gebauten aber bemerkenswerth schien 

 (Salices; Robinia Pseud-Acacia, Crataegus Oxyacantha). In den Krystall- 

 zellen der Blätter fehlte Phloroglucin wie in denen der Axenorgane. 



Es erübrigt noch die Aufzählung der Fälle, wo Phloroglucin in 

 den Blättern nicht nachzuweisen war. Hierher gehören zunächst die 

 Gewächse, welche dieses Körpers überhaupt vollkommen entbehren 

 (Aristolochia Sipho, Camelina sativa^ Carum Carvi, Chlorophytum 

 Sternbergianum, Clematis montana, CL panniculata, CL recta, Cl. son- 

 garica, Cochlea7'ia Armoracia, Cytisus Laburnum, Delphinium elatior, 

 Dendrobium chrysanthum, Erigeron canadensis, Foeniculum vulgare, 

 Fraxinus excelsior, Ilew Aquifolium, Ligustrum vulgare, Linum usita- 

 tissimum, Melandryum album, Papaver somniferum, Peperomia pereskii- 

 folia^ Philodendron pertusum, Pisum sativum, Solanum Dulcamara, 

 S. Lycopersicum , S. capsicasirum , S. nigrum, S. Schlechtendalianum, 

 S. tuberosum, Tradescantia virginica, Zea Mays). Aber es kamen auch 

 Pflanzen zur Beobachtung, bei denen in den Axenorganen Phloroglucin, 

 wenn auch nur in geringen Mengen, aufgefunden wurde, deren Blätter 

 gleichwohl nicht eine Andeutung der Reaction aufwiesen (Celastrus 

 japonicus, Deutzia gracilis, Sambucus nigra, Syringa vulgaris, Taraxacum 

 ofßcinale); dagegen führten alle Pflanzen, deren Axenorgane mit 

 Vanillin-Salzsäure kräftig reagirten, auch in den Blättern Phloroglucin. 



Niederblätter und Hochblätter waren häufig phloroglucinhaltig; 

 sie dürften sich darin nach den Organtheilen richten, von denen sie 

 gebildet wurden, sofern sie nicht als Ablagerungsstätten auftreten, wie 

 die meist relativ phloroglucinreichen Knospenschuppen für den Vege- 



