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i'œut'd'oiseau des résultats aussi satisfaisants que pour l'œuf 

 de grenouille, ainsi que nous l'avons signalé dès 1880 (1). 



Il est indispensable de colorerles coupes, et il est également 

 nécessaire de les monter en les disposant successivement sur 

 une ou plusieurs plaques de verres, de façon qu'elles se suc- 

 cèdent exactement dans l'ordre où elles ont été obtenues. Il 

 n'est donc pas possible de placer toutes les coupes dans une 

 cupule pleine d'une faible solution de picro-carmin, car elles 

 se mêleraient, et on ne pourrait rétablir leur ordre de succes- 



(1) Dans un récent travail sur l'œuf des reptiles (Reifung und Furchung 

 (les Reptilieneles; in Arbeiten aus (1er Zoologischzootomischen Institut in 

 Wuzburg, t. V], p. 159), C.-F. Sarazin déclare que le collodionage des sur- 

 faces de section, dont il décrit très exactement la manœuvre, est le seul pro- 

 cédé qui lui ait permis d'obtenir des coupes suffisamment minces et intactes; 

 mais il attril^e ce procédé à Mason, qui l'aurait publié dans le Zoolog. Jahres- 

 bcricht. Nous croyons donc devoir rappeler ici succinctement les principaux 

 points de la note que nous avons communiquée, dès 1880, sur ce sujet, à la 

 Société de biologie (De quelques perfectionnements à l'emploi du collodion 

 en technique histologique, Société de biologie, 1880) : « Ce perfectionnement 

 a trait aux coupes d'objets qui, par leur nature, semblent se soustraire à la 

 pratique des coupes régulières. Les œufs de Batraciens, par exemple, lorsque 

 la segmentation a donné les grosses cellules qui constituent le blastoderme, 

 sont extrêmement difticiles à débiter en coupes, parce que les cellules, relati- 

 vement grosses et pleines de grains ou tablettes vitellines, se vident de ces 

 tablettes lorsque le rasoir les a ouvertes, à peu près comme se viderait un 

 sac de blé éventré. Pour éviter cet inconvénient, il ne suffit pas d'avoir collo- 

 dionné la pièce en niasse (l'œuf tout entier), il faut collodionner après chaque 

 coupe la surface de section de l'objet, de manière que les éléments qui vont 

 faire partie de la coupe suivante se trouvent agglutinés à la face inférieure 

 d'une lamelle de collodion. Ce procédé n'est pas aussi long qu'on pourrait le 

 croire au premier abord, car le temps nécessaire pour monter et disposer sur 

 la lame porte-objet la coupe qu'on vient de faire, suffit pour que le collodion 

 déposé sur la surface de section se solidifie assez pour rendre possible la coupe 

 suivante. (Comme toujours, lorsqu'on manie le collodion en histologie, il ne 

 faut pas le laisser sécher, mais l'arroser d'un peu d'alcool lorsqu'il s'est soli- 

 difié.) » Depuis cette époque, ce mode d'emploi du collodion est devenu une 

 pratique courante dans notre laboratoire. M. G. Hervé l'a appliqué pendant 

 toutes ces dernières années pour une série de recherches qu'il publiera bientôt 

 sur le développement de l'extrémité céphalique de l'embryon, et nous nous 

 sommes fait un plaisir de donner, à toute personne qui désirait avoir recours 



cette technique, des renseignements pratiques plus explicites qu'on n'en peut 

 fournir dans une indication théorique. Nous ne doutons pas que cet emploi du 

 collodion ne devienne très général. 



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